| 中文摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-31页 |
| ·鱼类雌核发育研究 | 第15页 |
| ·鱼类天然雌核发育研究 | 第15-16页 |
| ·人工诱导鱼类雌核发育 | 第16-25页 |
| ·人工诱导鱼类雌核发育方法 | 第16-19页 |
| ·雌核发育二倍体的鉴别 | 第19-23页 |
| ·鱼类雌核发育的意义和应用前景 | 第23-24页 |
| ·人工诱导鱼类雌核发育存在的主要问题 | 第24-25页 |
| ·鱼类性别决定和分化 | 第25-26页 |
| ·人工诱导鱼类性反转 | 第26-27页 |
| ·草鱼概述 | 第27-28页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第28-31页 |
| 第二章 雌核发育二倍体草鱼人工诱导的研究 | 第31-45页 |
| ·材料和方法 | 第32-36页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-36页 |
| ·结果与分析 | 第36-40页 |
| ·异源精子的选择及不同供体精子紫外线照射所需时间比较 | 第36-37页 |
| ·温度休克法制备抑制第二极体排出及抑制第一次卵裂雌核发育草鱼 | 第37-39页 |
| ·抑制第二极体排出及抑制第一次卵裂雌核发育草鱼群体的建立 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-45页 |
| ·精子遗传灭活 | 第40-42页 |
| ·染色体加倍方法 | 第42-43页 |
| ·鱼类人工雌核发育中存在的问题 | 第43-44页 |
| ·人工雌核发育二倍体草鱼群体建立的意义 | 第44-45页 |
| 第三章 雌核发育草鱼的胚胎发育及孵化温度、水溶氧量对胚胎发育的影响 | 第45-58页 |
| ·材料和方法 | 第46-47页 |
| ·实验材料 | 第46页 |
| ·雌核发育草鱼胚胎发育的观察 | 第46-47页 |
| ·孵化温度对雌核发育草鱼胚胎的影响 | 第47页 |
| ·水溶氧量对雌核发育草鱼胚胎的影响 | 第47页 |
| ·结果与分析 | 第47-56页 |
| ·雌核发育草鱼卵的形态及胚胎发育 | 第47-53页 |
| ·孵化温度对胚胎发育的影响 | 第53-55页 |
| ·水溶氧量对胚胎发育的影响 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56-58页 |
| 第四章 人工雌核发育草鱼形态学特征、红细胞大小及染色体检测 | 第58-68页 |
| ·材料和方法 | 第59-61页 |
| ·实验材料 | 第59-60页 |
| ·实验方法 | 第60-61页 |
| ·结果与分析 | 第61-65页 |
| ·雌核发育草鱼同普通草鱼的形态学特征比较 | 第61-62页 |
| ·雌核发育草鱼同普通草鱼的红细胞大小比较 | 第62-63页 |
| ·雌核发育草鱼染色体观察 | 第63-65页 |
| ·讨论 | 第65-68页 |
| ·从形态学特征判定雌核发育鱼真伪 | 第65-66页 |
| ·红细胞体积大小与染色体倍性成正比 | 第66页 |
| ·雌核发育鱼中微小染色体的探讨 | 第66-68页 |
| 第五章 雌核发育二倍体草鱼群体微卫星分析、RAPD分子标记及SCAR标记转化 | 第68-76页 |
| ·材料和方法 | 第68-71页 |
| ·实验材料 | 第69页 |
| ·实验方法 | 第69-71页 |
| ·结果与分析 | 第71-73页 |
| ·微卫星标记的检测 | 第71-72页 |
| ·RAPD方法寻找雌核发育草鱼与普通草鱼的分子标记 | 第72-73页 |
| ·SCAR标记的转化与验证 | 第73页 |
| ·讨论 | 第73-76页 |
| ·微卫星引物适用性的讨论 | 第74页 |
| ·RAPD分子标记的应用及SCAR标记转化 | 第74-76页 |
| 第六章 雌核发育二倍体草鱼的性腺发育研究及性反转的诱导 | 第76-89页 |
| ·材料和方法 | 第77-79页 |
| ·雌核发育草鱼性腺组织学观察及性别比例统计 | 第77-78页 |
| ·雌核发育草鱼性反转的诱导及早期性腺组织切片检测 | 第78-79页 |
| ·结果与分析 | 第79-84页 |
| ·雌核发育草鱼性腺观察 | 第79-82页 |
| ·性反转雌核发育草鱼的性腺观察 | 第82-84页 |
| ·讨论 | 第84-89页 |
| ·雌核发育后代生长与性腺发育研究 | 第84-87页 |
| ·雌核发育草鱼的性反转诱导 | 第87-89页 |
| 第七章 雌核发育草鱼Foxl2基因克隆及表达研究 | 第89-99页 |
| ·材料和方法 | 第91-94页 |
| ·雌核发育草鱼Foxl2 cDNA的分子克隆 | 第91-94页 |
| ·Foxl2基因在不同组织的表达 | 第94页 |
| ·RT-PCR检测雌核发育草鱼性腺中Foxl2的表达 | 第94页 |
| ·结果与分析 | 第94-97页 |
| ·雌核发育草鱼Foxl2 cDNA和氨基酸部分序列拼接及比较 | 第94-95页 |
| ·雌核发育草鱼Foxl2各组织的表达 | 第95-97页 |
| ·大规模检测雌核发育草鱼性腺中Foxl2的表达 | 第97页 |
| ·讨论 | 第97-99页 |
| 第八章 雌核发育草鱼线粒体全基因组测序与分析 | 第99-108页 |
| ·材料和方法 | 第100-102页 |
| ·实验材料 | 第100页 |
| ·总DNA的提取 | 第100页 |
| ·引物设计和PCR扩增 | 第100-101页 |
| ·线粒体基因组各片段的测序 | 第101页 |
| ·全序列的拼接 | 第101-102页 |
| ·全序列分析方法 | 第102页 |
| ·结果与分析 | 第102-106页 |
| ·雌核发育草鱼线粒体基因组结构分析 | 第102-104页 |
| ·蛋白质编码区分析 | 第104-105页 |
| ·非编码区及RNA分析 | 第105-106页 |
| ·雌核发育草鱼、普通草鱼及异源四倍体鲫鲤线粒体全基因组的比较分析 | 第106页 |
| ·讨论 | 第106-108页 |
| 第九章 总结 | 第108-112页 |
| 参考文献 | 第112-125页 |
| 博士学习期间撰写、发表的主要论文及获奖情况 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
