| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第13-39页 |
| 1.1 电化学生物传感器 | 第13-25页 |
| 1.1.1 电化学生物传感器的分类 | 第14-24页 |
| 1.1.2 电化学生物传感器的发展前景 | 第24-25页 |
| 1.2 纳米材料及生物信号放大技术在电化学生物传感器中的应用 | 第25-35页 |
| 1.2.1 纳米材料在电化学生物传感器中的应用 | 第25-27页 |
| 1.2.2 酶催化放大技术在电化学生物传感器中的应用 | 第27-30页 |
| 1.2.3 生物信号放大技术在电化学生物传感器中的应用 | 第30-35页 |
| 1.3 本文的研究思路 | 第35-39页 |
| 第二章 基于树枝状DNA-Au@Pt纳米结构和卟啉锰电催化放大技术的电化学适体传感器 | 第39-49页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 实验部分 | 第40-42页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第40页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第40页 |
| 2.2.3 C_(60)纳米颗粒(nano-C_(60))的制备 | 第40-41页 |
| 2.2.4 制备Au@Pt纳米颗粒(Au@Pt NPs) | 第41页 |
| 2.2.5 制备Au@Pt NPs-Thi-TBA/S1-BSA(Au@Pt NPs-DNA1)及Au@Pt NPs-Thi-S2-BSA(Au@Pt NPs-DNA2)纳米复合材料 | 第41页 |
| 2.2.6 电化学适体传感器的构建 | 第41-42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-47页 |
| 2.3.1 L-半胱氨酸(RSH)介导的MnTPP电催化放大反应的机理 | 第42-43页 |
| 2.3.2 nano-C_(60)的SEM表征及Au@Pt NPs的TEM表征 | 第43页 |
| 2.3.3 电化学适体传感器修饰过程的电化学表征 | 第43-44页 |
| 2.3.4 电化学适体传感器的信号放大性能 | 第44-45页 |
| 2.3.5 传感器对TB的分析性能研究 | 第45-46页 |
| 2.3.6 电化学适体传感器的特异性及可行性分析性能研究 | 第46-47页 |
| 2.4 结论 | 第47-49页 |
| 第三章 基于供-受体型光电材料及其信号增强剂复合纳米囊材料的自增强型超灵敏光致电化学生物传感器 | 第49-65页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 实验部分 | 第50-55页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第50-51页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第51-52页 |
| 3.2.3 细胞培养及总RNA的提取 | 第52页 |
| 3.2.4 凝胶电泳 | 第52页 |
| 3.2.5 合成PCP纳米囊 | 第52页 |
| 3.2.6 MB-primer DNA生物复合物,SiO_2NPs-hairpin DNA生物复合物以及DNA环形模板的合成 | 第52-53页 |
| 3.2.7 MicroRNA检测的放大步骤 | 第53页 |
| 3.2.8 自增强型光致电化学生物传感器的制备 | 第53-54页 |
| 3.2.9 光致电化学信号测定 | 第54-55页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第55-64页 |
| 3.3.1 纳米材料的表征 | 第55页 |
| 3.3.2 酶辅助目标物双循环放大反应及光致电化学生物传感器的修饰过程表征 | 第55-57页 |
| 3.3.3 光致电化学传感器制备过程的条件优化 | 第57页 |
| 3.3.4 不同的光致电化学传感器制备方式的对比 | 第57-59页 |
| 3.3.5 自增强型光致电化学生物感器的分析测试性能研究 | 第59-60页 |
| 3.3.6 自增强型光致电化学生物感器的选择性及稳定性研究 | 第60页 |
| 3.3.7 传感器对于癌细胞中microRNA定量测定的分析性能研究 | 第60-64页 |
| 3.4 结论 | 第64-65页 |
| 第四章 基于目标物-核酸转换-放大策略及电子隧穿距离调控策略构建通用型比率法光致电化学生物传感器 | 第65-79页 |
| 4.1 引言 | 第65-66页 |
| 4.2 实验部分 | 第66-70页 |
| 4.2.1 实验试剂与仪器 | 第66-67页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第67页 |
| 4.2.3 细胞培养及总RNA提取 | 第67页 |
| 4.2.4 凝胶电泳 | 第67-68页 |
| 4.2.5 制备CdSQDs和Signal Probe 1 | 第68页 |
| 4.2.6 制备SiO_2@MB纳米材料,Signal Probe 2以及MBD-hairpin DNA生物纳米复合物 | 第68-69页 |
| 4.2.7 目标物miRNA的信号转换及放大 | 第69页 |
| 4.2.8 光致电化学生物传感界面的组装步骤 | 第69-70页 |
| 4.2.9 光致电化学信号测定 | 第70页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第70-77页 |
| 4.3.1 纳米材料的形貌及水溶性表征 | 第70-71页 |
| 4.3.2 信号标记物的光致电化学信号响应 | 第71页 |
| 4.3.3 信号标记物的荧光性能 | 第71-72页 |
| 4.3.4 信号标记物的紫外可见吸收光谱 | 第72-73页 |
| 4.3.5 比率型光致电化学生物感器修饰过程的电化学表征 | 第73页 |
| 4.3.6 凝胶电泳表征 | 第73-74页 |
| 4.3.7 比率分析电致化学发光传感器分析检测性能 | 第74-75页 |
| 4.3.8 比率型光致电化学生物感器的选择性研究 | 第75-76页 |
| 4.3.9 比率型光致电化学生物感器对癌细胞中miRNA的应用性能研究 | 第76-77页 |
| 4.4 结论 | 第77-79页 |
| 第五章 基于波长选择性光电活性材料构建同一界面多组分检测型光致电化学生物传感器 | 第79-91页 |
| 5.1 引言 | 第79-80页 |
| 5.2 实验部分 | 第80-84页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第80-81页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第81-82页 |
| 5.2.3 信号标记物1(MPTNPs/AuNPs/发夹DNA1/HT)和信号标记物2(TiO_2NPs/AuNPs/发夹DNA2/HT)光电活性材料的制备 | 第82页 |
| 5.2.4 N.BstNBI酶辅助的目标物循环放大策略的步骤 | 第82-83页 |
| 5.2.5 制备多组分分析型PEC生物传感器 | 第83页 |
| 5.2.6 光致电化学信号测定 | 第83页 |
| 5.2.7 从药物刺激的癌细胞中提取实际样本 | 第83-84页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第84-89页 |
| 5.3.1 纳米材料的表征 | 第84-85页 |
| 5.3.2 PEC生物传感器修饰过程的电化学表征 | 第85页 |
| 5.3.3 PEC生物传感器的多组分分析性能 | 第85-86页 |
| 5.3.4 PEC生物传感器的优化 | 第86-87页 |
| 5.3.5 同一界面多组分同时检测型PEC生物传感器的分析测试性能研究 | 第87-88页 |
| 5.3.6 PEC生物传感器的特异性分析性能研究 | 第88页 |
| 5.3.7 PEC生物传感器的应用性能研究 | 第88-89页 |
| 5.4 结论 | 第89-91页 |
| 第六章 基于近红外光调控型光致电化学细胞表面蛋白分析技术及其体外药物筛选应用研究 | 第91-107页 |
| 6.1 引言 | 第91-92页 |
| 6.2 实验部分 | 第92-96页 |
| 6.2.1 实验试剂与仪器 | 第92-93页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第93页 |
| 6.2.3 细胞培养 | 第93页 |
| 6.2.4 流式细胞分析 | 第93-94页 |
| 6.2.5 制备AuNR/dsDNA/MB-Annexin V生物纳米复合物(Tag_(kinetic)) | 第94页 |
| 6.2.6 制备AuNR/dsDNA/Cy3-Annexin V生物纳米复合物 | 第94-95页 |
| 6.2.7 制备CQDs/PAMAM/ATP1A1 Ab生物纳米复合物(Tag_(stable)) | 第95页 |
| 6.2.8 光致电化学细胞传感器的制备 | 第95页 |
| 6.2.9 光致电化学信号测定 | 第95-96页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第96-104页 |
| 6.3.1 光致电化学细胞传感器修饰过程的电化学表征 | 第96页 |
| 6.3.2 Tag_(kinetic)的构建及表征 | 第96-100页 |
| 6.3.3 Tag_(stable)的表征 | 第100-101页 |
| 6.3.4 混合信号解析策略的原理 | 第101-102页 |
| 6.3.5 光致电化学细胞传感器同一界面多组分检测性能 | 第102页 |
| 6.3.6 光致电化学细胞传感器用于体外药物筛选的性能研究 | 第102-104页 |
| 6.4 结论 | 第104-107页 |
| 第七章 总结与展望 | 第107-109页 |
| 参考文献 | 第109-125页 |
| 读博士学位期间公开发表的学术论文 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
