| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩写表 | 第8-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-22页 |
| 引言 | 第11页 |
| 1.1 淀粉的生物合成及淀粉生物合成相关关键酶 | 第11-15页 |
| 1.1.1 腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase) | 第11-12页 |
| 1.1.2 淀粉合成酶(SS) | 第12-13页 |
| 1.1.3 淀粉分支酶(SBE) | 第13页 |
| 1.1.4 淀粉去分支酶(DBE) | 第13-14页 |
| 1.1.5 淀粉磷酸化酶(SP) | 第14-15页 |
| 1.2 转录因子 | 第15-20页 |
| 1.2.1 MADS-box转录因子 | 第15-17页 |
| 1.2.2 玉米中MADS-box基因的统计 | 第17-18页 |
| 1.2.3 植物MADS-box基因的生物学功能 | 第18-20页 |
| 1.3 转录因子对淀粉合成关键酶作用的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.4 研究的目的和意义 | 第22页 |
| 2 实验材料与方法 | 第22-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 2.1.2 菌株与载体 | 第22-23页 |
| 2.1.3 酶及试剂 | 第23页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-37页 |
| 2.2.1 生物信息学分析 | 第23-24页 |
| 2.2.2 ZmMADS11基因的克隆 | 第24-27页 |
| 2.2.3 ZmMADS11的组织特异性表达分析 | 第27-29页 |
| 2.2.4 ZmMADS11转录激活活性分析 | 第29-30页 |
| 2.2.5 ZmMADS11的亚细胞定位 | 第30页 |
| 2.2.6 淀粉合成关键酶基因启动子的克隆 | 第30-32页 |
| 2.2.7 MADS11对淀粉合成关键酶基因启动子活性的调控 | 第32-35页 |
| 2.2.8 MADS11与各淀粉合成关键酶基因启动子的结合 | 第35-37页 |
| 3 结果与分析 | 第37-48页 |
| 3.1 ZmMADS11的序列及蛋白结构预测与分析 | 第37-39页 |
| 3.2 ZmMADS11的系统进化树构建 | 第39-40页 |
| 3.3 ZmMADS11基因cDNA的扩增 | 第40-41页 |
| 3.4 ZmMADS11的组织特异性表达分析 | 第41-43页 |
| 3.4.1 RNA提取 | 第41页 |
| 3.4.2 实时定量PCR标准曲线的建立 | 第41-42页 |
| 3.4.3 ZmMADS11的表达特性分析 | 第42-43页 |
| 3.5 ZmMADS11转录激活活性分析 | 第43-44页 |
| 3.6 ZmMADS11的亚细胞定位分析 | 第44页 |
| 3.7 淀粉生物合成途径中关键酶基因启动子的克隆 | 第44-45页 |
| 3.8 ZmMADS11对淀粉合成关键酶基因启动子活性的影响 | 第45-47页 |
| 3.9 ZmMADS11与淀粉合成关键酶基因启动子结合特性分析 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 附录 | 第60-66页 |
| 附录1 玉米中75个MADS-box基因以及序列特征 | 第60-63页 |
| 附录2 启动子引物序列 | 第63-64页 |
| 附录3 实验中所用培养基配方 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
