| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与方法 | 第13-22页 |
| ·材料 | 第13-14页 |
| ·实验动物 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13-14页 |
| ·主要仪器 | 第14页 |
| ·方法 | 第14-22页 |
| ·卵巢体外培养体系的配制 | 第14-15页 |
| ·实验分组 | 第15页 |
| ·卵巢的采集和体外培养 | 第15页 |
| ·卵巢组织的石蜡制片 | 第15-16页 |
| ·总 RNA 的提取 | 第16-17页 |
| ·提取RNA 所用器械、试剂的处理 | 第16页 |
| ·卵巢组织样本总 RNA 的提取 | 第16页 |
| ·分光光度计检测总 RNA 的浓度和纯度 | 第16-17页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳评估总 RNA 的质量 | 第17页 |
| ·基因芯片检测筛选大鼠卵巢组织差异表达基因 | 第17-20页 |
| ·RNA 扩增和标记 | 第17-19页 |
| ·芯片杂交 | 第19-20页 |
| ·芯片扫描 | 第20页 |
| ·基因芯片的数据处理 | 第20页 |
| ·统计分析 | 第20-22页 |
| 第3章 结果 | 第22-33页 |
| ·新生大鼠卵巢在不同因子作用下卵巢生长情况 | 第22-25页 |
| ·新生大鼠卵巢在正常Waymouth 培养体系中培养8 天前后的组织学观察 | 第22页 |
| ·新生大鼠卵巢在分别加入EGF 和GDF-9 的Waymouth 培养体系中培养8 天后组织学观察 | 第22-23页 |
| ·新生大鼠卵巢在分别加入 E2和 P4的 Waymouth 培养体系中培养 8 天后组织学观察 | 第23-25页 |
| ·新生大鼠卵巢中原始卵泡启动生长过程中原癌基因的表达变化 | 第25-33页 |
| ·大鼠卵巢组织中提取的全基因组总 RNA 的浓度和纯度 | 第25-26页 |
| ·基因芯片杂交的质量控制 | 第26-28页 |
| ·基因芯片的杂交结果 | 第28-30页 |
| ·新生大鼠卵巢在正常Waymouth 培养体系中培养8 天前后原癌基因的表达变化 | 第30-31页 |
| ·新生大鼠卵巢EGF 培养8 天与空白培养8 天后原癌基因的表达变化 | 第31页 |
| ·新生大鼠卵巢GDF9 培养8 天与空白培养8 天后原癌基因的表达变化 | 第31页 |
| ·新生大鼠卵巢 E2 培养8 天与空白培养8 天后原癌基因的表达变化 | 第31-32页 |
| ·新生大鼠卵巢 P4 培养8 天与空白培养8 天后原癌基因的表达变化 | 第32-33页 |
| 第4章 讨论 | 第33-40页 |
| ·新生大鼠卵巢在不同因子作用下的生长情况 | 第33页 |
| ·四大类原癌基因在大鼠原始卵泡启动中的作用 | 第33-38页 |
| ·新生大鼠卵巢培养8 天后表达上调的原癌基因在原始卵泡启动中的作用 | 第33-36页 |
| ·新生大鼠卵巢培养8 天后表达下调的原癌基因在原始卵泡启动中的作用 | 第36-38页 |
| ·四种因子对原始卵泡启动生长的影响与原癌基因的关系 | 第38-40页 |
| 第5章 结论 | 第40-41页 |
| 致谢 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 附带综述 | 第48-56页 |
