摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1.前言 | 第9-15页 |
2.主要缩略词中英文对照 | 第15-17页 |
3.实验材料和方法 | 第17-36页 |
3.1 实验材料 | 第17-22页 |
3.1.1 细胞及细胞培养 | 第17页 |
3.1.2 主要试剂 | 第17-19页 |
3.1.3 主要溶液及试剂的配置 | 第19-20页 |
3.1.4 主要仪器 | 第20-22页 |
3.2 实验方法 | 第22-35页 |
3.2.1 免疫组化与细胞免疫荧光 | 第22-23页 |
3.2.2 Westernblotting蛋白印记实验 | 第23-25页 |
3.2.3 细胞活性CCK-8实验 | 第25页 |
3.2.4 流式细胞学相关检测 | 第25-26页 |
3.2.5 克隆成形结晶紫染色 | 第26-27页 |
3.2.6 RNA干扰敲低实验 | 第27-28页 |
3.2.7 RNA的收集与提取 | 第28页 |
3.2.8 实时定量荧光PCR实验 | 第28-29页 |
3.2.9 细胞活性EdU实验 | 第29-30页 |
3.2.10 核质分离实验 | 第30-31页 |
3.2.11 质粒构建 | 第31-32页 |
3.2.12 DNA损伤彗星实验 | 第32-33页 |
3.2.13 构建慢病毒及建立稳定的shYAP细胞系 | 第33-34页 |
3.2.14 衰老染色实验 | 第34页 |
3.2.15 裸鼠成瘤实验 | 第34-35页 |
3.3 统计分析 | 第35-36页 |
4.实验结果 | 第36-60页 |
4.1 软骨肉瘤的生长需要核YAP的表达 | 第36-40页 |
4.2 YAP/TEAD介导细胞周期阻滞并引起细胞衰老 | 第40-47页 |
4.3 敲低YAP引起的细胞生长抑制与体内p21的表达有关 | 第47-49页 |
4.4 YAP表达缺失参与DNA损伤并且与化疗敏感性相关 | 第49-51页 |
4.5 YAP通过非依赖p53和Sp1的方式调节p21的表达及其介导的细胞衰老 | 第51-56页 |
4.6 靶向致癌基因YAP和p21促进消除由治疗诱导的衰老细胞 | 第56-60页 |
讨论 | 第60-64页 |
参考文献 | 第64-70页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第70页 |
研究生期间参加的学术会议 | 第70-71页 |
致谢 | 第71页 |