英文缩略词 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
前言 | 第18-31页 |
1 骨质疏松症概述 | 第18-26页 |
1.1 骨质疏松症发病机制研究 | 第18-19页 |
1.2 成骨细胞与骨质疏松症 | 第19-21页 |
1.2.1 成骨细胞分化与骨形成 | 第19-20页 |
1.2.2 成骨细胞矿化与骨形成 | 第20页 |
1.2.3 BMP-2、OPG 和 RANKL 与骨形成 | 第20-21页 |
1.2.4 成骨细胞对破骨细胞的调控 | 第21页 |
1.3 破骨细胞与骨质疏松症 | 第21-26页 |
1.3.1 骨吸收的分子机制 | 第22-24页 |
1.3.1.1 RANK/RANKL 与骨吸收 | 第23页 |
1.3.1.2 NF-κB 和 MAPK 信号通路与骨吸收 | 第23-24页 |
1.3.1.3 c-fos 和 NFATc1 与骨吸收 | 第24页 |
1.3.2 TRAP、MMP-9、CTR 和 Cathepsin K 与骨吸收 | 第24-25页 |
1.3.3 炎症因子与骨吸收 | 第25-26页 |
2 卵黄蛋白研究进展 | 第26-27页 |
2.1 卵黄蛋白原与卵黄蛋白 | 第26页 |
2.2 卵黄蛋白研究现状 | 第26-27页 |
2.3 卵黄蛋白与骨质疏松 | 第27页 |
3 鱼卵的研究进展 | 第27-29页 |
3.1 鱼卵的主要成分 | 第27-28页 |
3.2 鱼卵的研究现状 | 第28页 |
3.3 鱼卵蛋白研究进展 | 第28-29页 |
4 立题依据、研究目的和意义 | 第29-31页 |
第一章 具有促进成骨细胞增殖的水产动物卵水溶性糖蛋白的筛选14 | 第31-40页 |
1 实验材料 | 第31-32页 |
1.1 实验材料 | 第31页 |
1.2 试剂 | 第31-32页 |
1.3 细胞株 | 第32页 |
1.4 仪器 | 第32页 |
2 实验方法 | 第32-33页 |
2.1 各种水产动物卵水溶性糖蛋白的提取和制备 | 第32页 |
2.2 水产动物卵水溶性糖蛋白唾液酸含量的检测 | 第32-33页 |
2.3 水产动物卵水溶性糖蛋白对 MC3T3-E1 成骨细胞增殖活性的研究 | 第33页 |
2.4 统计学分析 | 第33页 |
3 实验结果 | 第33-39页 |
3.1 各种水产动物卵水溶性糖蛋白唾液酸含量的比较研究 | 第33-36页 |
3.2 各种水产动物卵水溶性糖蛋白促进 MC3T3-E1 成骨细胞增殖活性的研究 | 第36-39页 |
4 小结 | 第39-40页 |
第二章 鲫鱼卵唾液酸糖蛋白对 MC3T3-E1 细胞增殖和分化的影响23 | 第40-55页 |
1 实验材料 | 第40-41页 |
1.1 实验材料 | 第40-41页 |
1.2 细胞株 | 第41页 |
1.3 试剂 | 第41页 |
1.4 仪器 | 第41页 |
2 实验方法 | 第41-45页 |
2.1 不同分子量鲫鱼卵唾液酸糖蛋白的制备及化学性质分析 | 第41-42页 |
2.2 对 MC3T3-E1 成骨细胞增殖活性的影响 | 第42页 |
2.3 对 MC3T3-E1 成骨细胞分化的影响 | 第42页 |
2.4 对 MC3T3-E1 成骨细胞矿化的影响 | 第42-43页 |
2.5 对 MC3T3-E1 成骨细胞骨形成相关基因 BMP-2、OPG 和 RANKL mRNA表达的影响 | 第43-44页 |
2.6 对 MC3T3-E1 成骨细胞骨形成相关基因 BMP-2、OPG 和 RANKL 蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
2.7 统计学分析 | 第45页 |
3 结果 | 第45-51页 |
3.1 不同分子量 Ca-SGP 化学性质分析 | 第45页 |
3.2 Ca-SGP 促进 MC3T3-E1 成骨细胞增殖的活性 | 第45-46页 |
3.3 Ca-SGP 促进不同分化时期 MC3T3-E1 成骨细胞中 ALP 的活性 | 第46-47页 |
3.4 Ca-SGP 促进不同分化时期 MC3T3-E1 成骨细胞中 OCN 和 COL I 的活性 | 第47-48页 |
3.5 Ca-SGP 促进 MC3T3-E1 成骨细胞矿化的作用 | 第48-49页 |
3.6 Ca-SGP 对 MC3T3-E1 成骨细胞骨形成相关基因 BMP-2、OPG 和 RANKLmRNA 表达的影响 | 第49-51页 |
3.7 Ca-SGP 对 MC3T3-E1 成骨细胞骨形成相关基因 BMP-2、OPG 和 RANKL蛋白表达的影响 | 第51页 |
4 讨论 | 第51-53页 |
5 本章小结 | 第53-55页 |
第三章 鲫鱼卵唾液酸糖蛋白对破骨细胞增殖和分化的影响 | 第55-65页 |
1 实验材料 | 第55-56页 |
1.1 实验材料 | 第55页 |
1.2 实验动物 | 第55页 |
1.3 试剂 | 第55-56页 |
1.4 仪器 | 第56页 |
2 实验方法 | 第56-58页 |
2.1 小鼠骨髓细胞体外诱导形成破骨细胞 | 第56页 |
2.2 对小鼠破骨细胞前体细胞及破骨细胞增殖活性的影响 | 第56-57页 |
2.3 对小鼠骨髓细胞向破骨细胞分化的影响 | 第57页 |
2.4 对小鼠破骨细胞 TRAP 活性的影响 | 第57页 |
2.5 对小鼠破骨细胞 IL-6、IL-1β和 TNF-α等促炎症因子分泌的影响 | 第57-58页 |
2.6 统计学分析 | 第58页 |
3 结果 | 第58-62页 |
3.1 Ca-SGP 对小鼠破骨细胞前体细胞及破骨细胞的增殖活性无影响 | 第58页 |
3.2 Ca-SGP 对小鼠破骨细胞前体细胞及破骨细胞 LDH 释放量无影响 | 第58-59页 |
3.3 Ca-SGP 抑制不同时期小鼠骨髓细胞向破骨细胞的分化 | 第59-61页 |
3.4 Ca-SGP 抑制小鼠破骨细胞 IL-6、IL-1β和 TNF-α等促炎症因子的分泌44 | 第61-62页 |
4 讨论 | 第62-63页 |
5 本章小结 | 第63-65页 |
第四章 鲫鱼卵唾液酸糖蛋白抑制骨吸收功能的作用机制研究 | 第65-81页 |
第一节 鲫鱼卵唾液酸糖蛋白对骨吸收功能相关基因 TRAP、MMP-9、CTR 和组织蛋白酶 K 表达的影响 | 第65-70页 |
1 实验材料 | 第65-66页 |
1.1 实验材料 | 第65页 |
1.2 实验动物 | 第65-66页 |
1.3 试剂 | 第66页 |
1.4 仪器 | 第66页 |
2 实验方法 | 第66-68页 |
2.1 QRT-PCR 法检测骨吸收功能相关基因 TRAP、MMP-9、CTR 和组织蛋白酶 K mRNA 的表达 | 第66-67页 |
2.2 Western blotting 法检测骨吸收功能相关基因 MMP-9 和组织蛋白酶 K 蛋白的表达 | 第67页 |
2.3 统计学分析 | 第67-68页 |
3 结果 | 第68-70页 |
3.1 Ca-SGP 抑制骨吸收功能相关基因 TRAP、MMP-9、CTR 和组织蛋白酶 KmRNA 的表达 | 第68-69页 |
3.2 Ca-SGP 抑制骨吸收功能相关基因 MMP-9 和组织蛋白酶 K 蛋白的表达52 | 第69-70页 |
第二节 鲫鱼卵唾液酸糖蛋白对破骨细胞分化NF-κB和NFATc1通路相关基因表达的影响 | 第70-79页 |
1 实验材料 | 第70页 |
1.1 实验材料 | 第70页 |
1.2 实验动物 | 第70页 |
1.3 试剂 | 第70页 |
2 实验方法 | 第70-71页 |
2.1 QRT-PCR 法检测 NF-κB 和 NFATc1 通路相关基因 mRNA 的表达 | 第70-71页 |
2.2 Western blotting 法检测 NF-κB 和 NFATc1 通路相关蛋白表达的影响 | 第71页 |
2.3 统计学分析 | 第71页 |
3 结果 | 第71-78页 |
3.1 Ca-SGP 抑制 RANKL 下游基因 TRAF6 mRNA 和蛋白的表达 | 第71-73页 |
3.1.1 Ca-SGP 抑制 RANKL 下游基因 TRAF6 mRNA 的表达 | 第71-73页 |
3.1.2 Ca-SGP 抑制 RANKL 下游基因 TRAF6 蛋白的表达 | 第73页 |
3.2 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成 NF-κB 通路相关基因 mRNA 的表达和蛋白磷酸化水平 | 第73-74页 |
3.2.1 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成 NF-κB 和 I-κB mRNA 的表达 | 第73-74页 |
3.2.2 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成 NF-κB 和 I-κB 蛋白的磷酸化水平 | 第74页 |
3.3 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成 MAPK 通路相关基因 mRNA 的表达和蛋白磷酸化水平 | 第74-76页 |
3.3.1 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成 p38、ERK 和 JNK mRNA 的表达 | 第74-75页 |
3.3.2 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成 p38、ERK 和 JNK 蛋白的磷酸化水平 | 第75-76页 |
3.4 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成相关核转录因子 c-fos 和 NFATc1 mRNA 和蛋白的表达 | 第76-78页 |
3.4.1 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成相关核转录因子 c-fos 和 NFATc1 mRNA 的表达 | 第76-77页 |
3.4.2 Ca-SGP 抑制破骨细胞形成相关核转录因子 c-fos 和 NFATc1 蛋白的表达 | 第77-78页 |
4 讨论 | 第78-79页 |
本章小结 | 第79-81页 |
结论 | 第81-82页 |
本论文的特色及创新之处 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-93页 |
致谢 | 第93-94页 |
个人简历 | 第94-95页 |
发表的学术论文 | 第95-96页 |