| 致谢 | 第4-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-14页 |
| 1 引言 | 第14-17页 |
| 2 实验材料 | 第17-23页 |
| 2.1 主动脉瓣膜组织来源 | 第17-18页 |
| 2.2 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.3 实验试剂 | 第19-23页 |
| 3 实验方法 | 第23-35页 |
| 3.1 人瓣膜间质细胞(VICs)的分离与培养 | 第23-24页 |
| 3.2 细胞siRNA转染 | 第24-25页 |
| 3.3 慢病毒HDAC6 shRNA转染 | 第25页 |
| 3.4 细胞培养及处理 | 第25-26页 |
| 3.5 Western Blot | 第26-31页 |
| 3.6 主动脉瓣膜组织von Kossa钙化染色 | 第31-32页 |
| 3.7 石蜡切片免疫组织化学检测 | 第32-33页 |
| 3.8 茜素红染色 | 第33-34页 |
| 3.9 钙沉淀定量分析 | 第34页 |
| 3.10 统计学方法 | 第34-35页 |
| 4 结果 | 第35-44页 |
| 4.1 HDAC6在CAVD的主动脉瓣膜组织中表达减少 | 第35-36页 |
| 4.2 抑制HDAC6促进hVICs成骨通路的激活 | 第36-37页 |
| 4.3 抑制HDAC6诱导hVICs的内质网应激 | 第37-38页 |
| 4.4 抑制HDAC6诱导的内质网应激调节hVICs成骨通路 | 第38-39页 |
| 4.5 ATF4是HDAC6调节内质网应激的下游分子 | 第39-41页 |
| 4.6 降低内质网应激可以阻止HDAC6抑制所诱导的hVICs成骨样分化 | 第41-43页 |
| 4.7 结论 | 第43-44页 |
| 5 讨论 | 第44-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 综述 | 第51-75页 |
| 参考文献 | 第64-75页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第75页 |
