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青虾性腺抑制激素和高血糖激素基因全长cDNA的克隆及序列分析

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-12页
第一章 文献综述第13-29页
    1 甲壳类眼柄神经激素的功能第13-18页
        1.1 研究眼柄神经激素功能的主要方法第13-14页
            1.1.1 眼柄切除术第14页
            1.1.2 活体注射重组表达蛋白第14页
            1.1.3 RNAi技术第14页
        1.2 促色素细胞激素的功能第14-15页
        1.3 CHH家族激素的功能第15-18页
            1.3.1 CHH第15-16页
            1.3.2 MIH第16-17页
            1.3.3 MOIH第17页
            1.3.4 GIH第17-18页
    2 甲壳类眼柄神经激素的一级结构第18-24页
        2.1 研究眼柄神经激素一级结构的主要方法第18-20页
            2.1.1 筛选cDNA文库第19页
            2.1.2 反转录PCR和快速扩增cDNA末端法第19-20页
        2.2 促色素细胞激素的一级结构第20-21页
            2.2.1 RPCH第20页
            2.2.2 PDH第20-21页
        2.3 CHH家族激素的一级结构第21-24页
            2.3.1 CHH第21-22页
            2.3.2 MIH第22页
            2.3.3 MOIH第22-23页
            2.3.4 GIH第23页
            2.3.5 离子转运肽(ITP)第23-24页
    3 甲壳类眼柄神经激素的表达第24-26页
        3.1 研究眼柄神经激素表达的主要方法第24-25页
            3.1.1 原位杂交技术与免疫细胞化学法第24页
            3.1.2 Northern印迹第24页
            3.1.3 RNase保护分析第24-25页
            3.1.4 RT-PCR法第25页
        3.2 眼柄神经激素的表达特征第25-26页
    4 甲壳类眼柄神经激素研究的展望第26-27页
    5 本研究的目的与意义第27-29页
第二章 青虾眼柄组织总RNA提取方法的研究第29-37页
    1 材料第29页
        1.1 实验虾第29页
        1.2 试剂第29页
        1.3 仪器第29页
    2 方法第29-31页
        2.1 RNase的灭除第30页
        2.2 青虾眼柄总RNA提取第30-31页
            2.2.1 RNAiso法第30页
            2.2.2 改良RNAiso法第30页
            2.2.3 RNeasy Mini Kit法第30页
            2.2.4 RNAiso/Unizol结合RNeasy Mini Kit法第30-31页
        2.3 青虾眼柄总RNA质量检测第31页
            2.3.1 总RNA纯度及完整性检测第31页
            2.3.2 RT-PCR检测总RNA质量第31页
    3 结果第31-34页
        3.1 RNAiso法提取总RNA的质量第31-32页
        3.2 改良RNAiso法提取总RNA的质量第32页
        3.3 RNeasy Mini Kit法提取总RNA的质量第32页
        3.4 RNAiso/Unizol结合RNeasy Mini Kit法提取总RNA的质量第32-34页
    4 讨论第34-36页
        4.1 色素的影响第35页
        4.2 DNA污染的去除第35页
        4.3 RNA的完整性第35-36页
    5 小结第36-37页
第三章 青虾性腺抑制激素基因的克隆与序列分析第37-61页
    1 材料第37-38页
        1.1 实验虾第37页
        1.2 试剂第37页
        1.3 仪器第37-38页
    2 方法第38-47页
        2.1 青虾眼柄总RNA的提取第38页
        2.2 青虾GIH-A和GIH-B部分片段的分离第38-39页
            2.2.1 引物的设计第38页
            2.2.2 反转录第38-39页
            2.2.3 部分片段扩增第39页
        2.3 青虾GIH-A和GIH-B的3’RACE第39-41页
            2.3.1 引物的设计第39-40页
            2.3.2 反转录第40页
            2.3.3 3’端扩增第40-41页
        2.4 青虾GIH-A和GIH-B的5’RACE第41-44页
            2.4.1 引物的设计第41页
            2.4.2 反转录第41-43页
            2.4.3 5’端扩增第43-44页
        2.5 PCR产物的克隆第44-46页
            2.5.1 感受态的制备第44-45页
            2.5.2 PCR产物的回收第45页
            2.5.3 连接第45页
            2.5.4 转化第45-46页
            2.5.5 重组克隆的筛选第46页
            2.5.6 重组克隆的鉴定第46页
        2.6 序列的测定及分析第46-47页
    3 结果第47-58页
        3.1 青虾眼柄总RNA抽提结果第47页
        3.2 青虾GIH-A和GIH-B部分片段的分离第47页
        3.3 青虾GIH-A和GIH-B 3’端的分离第47-48页
        3.4 青虾GIH-A和GIH-B 5’端的分离第48-49页
        3.5 序列分析第49-58页
            3.5.1 青虾GIH-A和GIH-B的序列结构特征第50-53页
                3.5.1.1 青虾GIH-A的序列结构特征第50-51页
                3.5.1.2 青虾GIH-B的序列结构特征第51-52页
                3.5.1.3 青虾GIH-A和GIH-B的序列差异第52-53页
            3.5.2 青虾GIH-A和GIH-B的同源性分析第53-56页
            3.5.3 甲壳动物CHH家族的系统进化分析第56-58页
    4 讨论第58-59页
    5 小结第59-61页
第四章 青虾高血糖激素基因的克隆与序列分析第61-73页
    1 材料第61页
    2 方法第61-62页
        2.1 青虾眼柄总RNA的提取第61页
        2.2 青虾CHH部分片段的分离第61页
            2.2.1 引物的设计第61页
            2.2.2 反转录第61页
            2.2.3 部分片段PCR扩增第61页
        2.3 青虾CHH的3’RACE第61-62页
            2.3.1 引物的设计第61-62页
            2.3.2 反转录第62页
            2.3.3 3’端扩增第62页
        2.4 青虾CHH的5’RACE第62页
            2.4.1 引物的设计第62页
            2.4.2 反转录第62页
            2.4.3 5’端扩增第62页
        2.5 PCR产物的克隆第62页
        2.6 序列的测定及分析第62页
    3 结果第62-70页
        3.1 青虾眼柄总RNA抽提结果第62页
        3.2 青虾CHH部分片段的分离第62-63页
        3.3 青虾CHH 3’端的分离第63页
        3.4 青虾CHH 5’端的分离第63-64页
        3.5 序列分析第64-70页
            3.5.1 青虾CHH的序列结构特征第64-65页
            3.5.2 青虾CHH的同源性分析第65-69页
            3.5.3 CHH的系统进化分析第69-70页
    4 讨论第70-72页
    5 小结第72-73页
全文结论第73-75页
参考文献第75-83页
附录 实验试剂及配置第83-85页
致谢第85-87页
已发表或已接受的论文第87页

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