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屎肠球菌TC3发酵工艺及对断奶仔猪应用效果研究

摘要第7-8页
Abstract第8-9页
缩略词表第10-11页
第一章 文献综述第11-24页
    1 益生菌概述第11-20页
        1.1 益生菌的定义第11页
        1.2 益生菌的筛选标准及菌种第11-13页
        1.3 益生菌的益生作用及机理第13-15页
            1.3.1 帮助宿主建立和维持正常的肠道优势种群第13页
            1.3.2 通过代谢产物和生理活性物质抑制或杀灭病原微生物第13-14页
            1.3.3 通过黏附机制和竞争排斥作用阻止病原菌的繁殖第14页
            1.3.4 加强黏膜屏障第14页
            1.3.5 增强免疫系统功能第14-15页
            1.3.6 提供营养物质促进生长第15页
        1.4 益生菌的生产工艺第15-20页
            1.4.1 固态发酵第15-16页
            1.4.2 液态深层发酵第16页
            1.4.3 液固两相发酵第16-17页
            1.4.4 合生发酵第17页
            1.4.5 浓缩工艺第17-18页
            1.4.6 干燥工艺第18-19页
            1.4.7 微胶囊技术第19-20页
    2 早期断奶仔猪的特点第20-21页
        2.1 消化道黏膜结构特点第20页
        2.2 营养消化特点第20页
        2.3 消化道微生物区系特点第20-21页
        2.4 免疫系统特点第21页
        2.5 内分泌系统特点第21页
    3 益生菌在断奶仔猪上的应用第21-22页
        3.1 提高生产性能第21-22页
        3.2 降低腹泻率,提高成活率第22页
        3.3 减少有害物质产生,改善畜舍环境第22页
    4 益生菌的研究方向第22-23页
        4.1 益生菌及其制剂的研发和应用第22-23页
        4.2 益生菌的作用机理第23页
    5 研究的目的意义第23-24页
第二章 屎肠球菌TC3株发酵工艺优化第24-39页
    2 材料和方法第24-27页
        2.1 材料第24-25页
            2.1.1 供试菌种第24页
            2.1.2 主要试剂第24页
            2.1.3 培养基配制第24-25页
            2.1.4 主要仪器设备第25页
        2.2 方法第25-27页
            2.2.1 屎肠球菌发酵工艺优化第25-27页
    3 结果与分析第27-37页
        3.1 发酵培养基中的生长曲线第27-28页
        3.2 单因素发酵培养基及条件确定第28-32页
            3.2.1 接种量的影响第28-29页
            3.2.2 最佳装液量的确定第29页
            3.2.3 最佳碳源的确定第29-30页
            3.2.4 最佳氮源的确定第30-31页
            3.2.5 最佳缓冲体系的确定第31-32页
        3.3 Plackett-Burman(PB)设计第32-33页
        3.4 最陡爬坡试验第33页
        3.5 响应面法(RSM)第33-37页
            3.5.1 Box-Behnken设计及结果第33-35页
            3.5.2 响应面交互作用分析及优化第35-37页
    4 讨论第37页
        4.1 屎肠球菌的培养特性及发酵培养基组成第37页
        4.2 响应面法优化培养基第37页
    5 本章小结第37-39页
第三章 益生菌发酵液对断奶仔猪应用试验第39-54页
    2 材料与方法第39-45页
        2.1 微生态制剂第39页
        2.2 所用试剂及配制第39-40页
        2.3 主要仪器设备第40页
        2.4 试验动物及试验设计第40-42页
            2.4.1 试验动物及分组第40-41页
            2.4.2 生产性能的测定第41页
            2.4.3 腹泻率及腹泻指数统计第41页
            2.4.4 死亡率统计第41页
            2.4.5 粪样样品的采集第41-42页
        2.5 DGGE凝胶电泳分析肠道菌群变化第42-45页
            2.5.1 粪样样品处理及细菌总DNA的提取第42页
            2.5.2 基因组DNA浓度、质量的测定第42页
            2.5.3 PCR扩增第42-43页
            2.5.4 变性梯度凝胶电泳(DGGE)第43-45页
    3 结果与分析第45-51页
        3.1 微生态制剂对断奶仔猪生长性能的影响第45页
        3.2 微生态制剂对断奶仔猪腹泻和死亡的影响第45-46页
        3.3 DGGE凝胶电泳分析结果第46-47页
            3.3.1 试验前期各组粪样基因组16S rRNA V3区PCR结果第46页
            3.3.2 试验后期各组粪样基因组16S rRNA V3区PCR结果第46-47页
        3.4 DGGE电泳图谱及多样性分析第47-51页
            3.4.1 试验期间各组DGGE电泳图谱多样性分析第47-49页
            3.4.2 试验期间各组DGGE电泳图谱相似性分析第49-51页
    4 讨论第51-53页
        4.1 试验方案第51页
        4.2 微生态制剂对生产性能和腹泻率的影响第51-52页
        4.3 益生菌对仔猪肠道菌群的影响第52页
        4.4 PCR/DGGE技术的应用第52-53页
    5 本章小结第53-54页
结论第54-55页
参考文献第55-61页
致谢第61页

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