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水溶液中蛋白质二级结构红外分析方法的建立及cAMP受体蛋白构象研究

摘要第6-8页
Abstract第8-10页
第一章 绪论第11-39页
    1.1 蛋白质构象研究概述第11-14页
        1.1.1 蛋白质的结构第11-13页
        1.1.2 蛋白质的二级结构第13-14页
    1.2 蛋白质二级结构的预测第14-15页
    1.3 蛋白质二级结构测试技术第15-31页
        1.3.1 核磁共振波谱法第16-19页
            1.3.1.1 核磁共振波谱法概述第16页
            1.3.1.2 NMR研究蛋白二级结构第16-19页
        1.3.2 圆二色谱第19-23页
            1.3.2.1 圆二色谱概述第19-20页
            1.3.2.2 蛋白质的圆二色性第20-21页
            1.3.2.3 CD数据拟合计算蛋白质二级结构第21-23页
        1.3.3 傅里叶红外光谱第23-31页
            1.3.3.1 红外光谱概述第23-24页
            1.3.3.2 蛋白质红外光谱第24-25页
            1.3.3.3 傅里叶红外光谱简介第25-27页
            1.3.3.4 傅里叶红外光谱用于蛋白二级结构分析第27-29页
            1.3.3.5 FTIR分析蛋白质构象变化第29-31页
    参考文献第31-39页
第二章 水溶液中蛋白质二级结构红外分析方法建立第39-61页
    2.1 引言第39-41页
    2.2 傅里叶红外数据分析方法第41-42页
    2.3 傅里叶红外光谱分析水溶液中蛋白二级结构第42-59页
        2.3.1 实验方法建立第42-51页
            2.3.1.1 实验仪器第42-44页
            2.3.1.2 实验条件第44-45页
            2.3.1.3 制样第45页
            2.3.1.4 实验方法及操作第45-47页
            2.3.1.5 数据处理第47-51页
        2.3.2 应用第51-59页
            2.3.2.1 可溶性鸟苷酸环化酶血红素结构域蛋白的二级结构研究第51-55页
            2.3.2.2 与圆二色谱法对比第55-59页
    参考文献第59-61页
第三章 环磷酸腺苷受体蛋白的结晶第61-94页
    3.1 CRP蛋白研究概况第61-74页
        3.1.1 CRP概述第62页
        3.1.2 CRP与cAMP的相互作用第62-64页
        3.1.3 CRP中的对称性第64-65页
        3.1.4 CRP与启动子的相互作用第65-67页
        3.1.5 CRP与RNA聚合酶的相互作用第67-69页
        3.1.6 CRP结合cAMP前后二级结构比较第69-70页
        3.1.7 cAMP诱导的CRP构象变化第70-74页
        3.1.8 CRP研究中待解决的问题第74页
    3.2 本研究的目的及意义第74-75页
    3.3 CRP变体蛋白的表达、纯化第75-80页
        3.3.1 试剂和仪器第75-76页
            3.3.1.1 质粒、菌种第75页
            3.3.1.2 实验试剂第75-76页
            3.3.1.3 实验仪器第76页
        3.3.2 实验方法第76-77页
            3.3.2.1 大肠杆菌感受态细胞的制备(CaCl_2法)第76页
            3.3.2.2 CRP~*蛋白质粒的转化第76页
            3.3.2.3 CRP~*蛋白的预表达第76-77页
            3.3.2.4 CRP~*蛋白的大量表达第77页
        3.3.3 CRP蛋白的纯化第77-78页
            3.3.3.1 Bio-Rex70层析第77-78页
            3.3.3.2 hydroxyapatite离子交换第78页
            3.3.3.3 Phenyl Sepharose层析第78页
        3.3.4 apo-CRP及CRP~*蛋白的结晶第78-80页
            3.3.4.1 蛋白的浓缩第78-79页
            3.3.4.2 apo-CRP蛋白的结晶及生长条件的优化第79页
            3.3.4.3 L148R CRP蛋白晶体生长条件的筛选第79页
            3.3.4.4 L148R CRP晶体生长条件的优化第79-80页
    3.4 实验结果第80-84页
    参考文献第84-94页
第四章 CRP中loop3和loop4的功能研究第94-109页
    4.1 引言第94-97页
        4.1.1 loop3和loop4功能研究现状第94-96页
        4.1.2 等温滴定量热法第96-97页
    4.2 试剂和仪器第97页
        4.2.1 实验试剂第97页
        4.2.2 实验仪器第97页
    4.3 实验方法第97-99页
        4.3.1 α-CRP蛋白样品的准备第97页
        4.3.2 α-CRP蛋白的圆二色谱第97页
        4.3.3 α-CRP蛋白的MALDI-TOF质谱第97-98页
        4.3.4 α-CRP蛋白的ANS荧光淬灭第98页
        4.3.5 CRP变体蛋白的等温量热实验第98-99页
    4.4 实验结果第99-105页
        4.4.1 CRP变体蛋白的二级结构比较第99-100页
        4.4.2 α-CRP蛋白的MALDI-TOF质谱第100-101页
        4.4.3 α-CRP蛋白的ANS荧光淬灭第101-103页
        4.4.4 α-CRP蛋白的ITC第103-105页
    4.5 讨论第105-107页
    参考文献第107-109页
论文发表情况第109-110页
致谢第110-111页

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