| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略语表（Abbreviation） | 第8-10页 |
| 1 前言 | 第10-17页 |
| 1.1 课题的由来与意义 | 第10-11页 |
| 1.2 国内外甘露糖受体的研究概况 | 第11-17页 |
| 1.2.1 甘露糖受体的结构 | 第11-12页 |
| 1.2.2 甘露糖受体的功能 | 第12-14页 |
| 1.2.4 甘露糖受体与疾病的关系 | 第14-15页 |
| 1.2.5 调控甘露糖受体表达的因素 | 第15-16页 |
| 1.2.6 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
| 2 实验材料与方法 | 第17-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.2 病原 | 第17页 |
| 2.2 主要仪器及厂家 | 第17-18页 |
| 2.3 主要试剂 | 第18页 |
| 2.4 主要溶液配制 | 第18-19页 |
| 2.4.1 常用培养基 | 第18-19页 |
| 2.4.2 感受态相关试剂配制 | 第19页 |
| 2.4.3 琼脂糖电泳相关溶液配制 | 第19页 |
| 2.5 实验方法 | 第19-39页 |
| 2.5.1 病原菌的分离与纯化 | 第19-20页 |
| 2.5.2 菌种的保藏 | 第20页 |
| 2.5.3 纯化菌株的人工感染实验 | 第20页 |
| 2.5.4 菌株的鉴定 | 第20-24页 |
| 2.5.5 总RNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.5.6 cDNA第一链的合成 | 第25-26页 |
| 2.5.7 zfMR基因cDNA片段的克隆 | 第26-28页 |
| 2.5.8 zfMR基因cDNA 3’末端扩增 | 第28-30页 |
| 2.5.9 zfMR基因cDNA 5’末端扩增 | 第30-34页 |
| 2.5.10 生物信息学分析 | 第34页 |
| 2.5.11 zfMR基因表达的定量分析 | 第34-36页 |
| 2.5.12 Western blotting检测zf MR蛋白水平的变化 | 第36-37页 |
| 2.5.13 免疫组化检测zf MR蛋白水平的变化 | 第37-39页 |
| 3 结果和分析 | 第39-59页 |
| 3.1 病原菌的分离纯化和人工感染结果 | 第39页 |
| 3.2 ZA菌株 16SrDNA的PCR结果 | 第39-41页 |
| 3.3 ZA菌株的生理生化鉴定结果 | 第41-42页 |
| 3.4 RNA样品的制备与鉴定 | 第42页 |
| 3.5 zfMR基因的生物信息学分析 | 第42-52页 |
| 3.5.1 zfMR基因cDNA全长及序列特征 | 第42-51页 |
| 3.5.2 zfMR的系统进化树分析 | 第51-52页 |
| 3.6 zfMR基因的表达分析 | 第52-59页 |
| 3.6.1 健康鱼不同组织内zfMR基因的表达 | 第52-53页 |
| 3.6.2 A. sobria刺激后免疫相关组织zfMR、IL-1β 和TNF-α 基因的表达 | 第53-57页 |
| 3.6.3 Western blot检测zf MR蛋白水平的变化 | 第57页 |
| 3.6.4 免疫组化法检测zf MR蛋白水平的变化 | 第57-59页 |
| 4 讨论 | 第59-61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-73页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
