| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 膜污染控制方法研究 | 第12-15页 |
| 1.1.1 微生物抑制剂处理 | 第12-13页 |
| 1.1.2 营养物的限制 | 第13页 |
| 1.1.3 生物群感效应控制 | 第13-14页 |
| 1.1.4 抗菌性纳米材料的应用 | 第14页 |
| 1.1.5 膜表面修饰 | 第14-15页 |
| 1.2 氯化有机物污染废水及其传统处理技术 | 第15-16页 |
| 1.3 Pd的催化效应 | 第16-17页 |
| 1.4 基于Pd催化反应的局限性和潜在解决方案 | 第17-18页 |
| 1.5 钯固定的膜系统易受生物污损影响 | 第18-20页 |
| 1.6 本实验研究路线 | 第20-21页 |
| 第2章 膜的制备及表征测试 | 第21-30页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.3.1 膜的合成 | 第22页 |
| 2.3.2 透射电子显微镜确认钯纳米颗粒的分布 | 第22-23页 |
| 2.3.3 扫描电子显微镜观察 | 第23页 |
| 2.3.4 原子力显微镜观察 | 第23页 |
| 2.3.5 接触角的测量 | 第23页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第23-29页 |
| 2.4.1 Pd纳米颗粒均匀分布于膜表面 | 第23-25页 |
| 2.4.2 金属Pd的修饰增加膜表面粗糙程度 | 第25-28页 |
| 2.4.3 1,2,3-三氮唑和Pd金属的修饰改变膜表面的亲疏水性 | 第28-29页 |
| 2.5 本章小结 | 第29-30页 |
| 第3章 人工生物膜反应器（Drip-flow biofilm reactor）抗生物膜污染测试 | 第30-43页 |
| 3.1 引言 | 第30页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.2.2 主要实验仪器 | 第30-31页 |
| 3.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 3.3.1 模式微生物 | 第31页 |
| 3.3.2 滴流式膜反应器（DFR）的安装 | 第31-32页 |
| 3.3.3 膜样品的处理 | 第32页 |
| 3.3.4 激光共聚焦显微镜表面观察生物膜 | 第32页 |
| 3.3.5 生物膜中活细胞计数 | 第32页 |
| 3.3.6 总蛋白定量 | 第32-33页 |
| 3.3.7 总糖定量 | 第33页 |
| 3.3.8 Pel的测定 | 第33-34页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第34-41页 |
| 3.4.1 1,2,3-三氮唑和金属Pd修饰后的膜能抑制铜绿假单胞菌的生长 | 第34-38页 |
| 3.4.2 蛋白测量被干扰 | 第38-39页 |
| 3.4.3 1,2,3-三氮唑和金属Pd修饰后的膜可抑制EPS中多糖的含量 | 第39-40页 |
| 3.4.4 铜绿假单胞菌生物膜中Pel多糖可被 1,2,3-三氮唑和金属Pd纳米颗粒抑制 | 第40-41页 |
| 3.5 本章小结 | 第41-43页 |
| 第4章 好氧膜反应器（AeMBR）生物膜污染测试 | 第43-62页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第43-44页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 4.2.2 主要实验仪器 | 第44页 |
| 4.3 实验方法 | 第44-52页 |
| 4.3.1 好氧膜生物反应器（AeMBR）反应器设定 | 第44-45页 |
| 4.3.2 AeMBR运行以及水质监测 | 第45-46页 |
| 4.3.3 膜样品的处理 | 第46页 |
| 4.3.4 总蛋白含量的检测 | 第46页 |
| 4.3.5 多糖的定量 | 第46页 |
| 4.3.6 ATP浓度检测 | 第46页 |
| 4.3.7 AI-2 含量的测定 | 第46-47页 |
| 4.3.8 16s基因高通量测序及分析 | 第47-52页 |
| 4.4 结果与讨论; | 第52-59页 |
| 4.4.1 PSU-TriN-NPs在AeMBRz中表现出较慢的TMP增长 | 第52-53页 |
| 4.4.2 PSU-TriN-NPs膜上EPS呈现出最低的蛋白浓度 | 第53-55页 |
| 4.4.3 1,2,3-三氮唑和Pd纳米颗粒抑制生物膜中多糖产生 | 第55-56页 |
| 4.4.4 1,2,3-三氮唑和Pd纳米颗粒显示出较强抗菌性 | 第56-57页 |
| 4.4.5 PSU-TriN-NPs膜上AI-2 浓度显著降低 | 第57页 |
| 4.4.6 PSU-TriN-NPs膜可以影响生物膜中群落结构 | 第57-59页 |
| 4.5 本章小结 | 第59-62页 |
| 第5章 结论与建议 | 第62-63页 |
| 5.1 结论 | 第62页 |
| 5.2 建议 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 作者攻读硕士学位期间发表的论文 | 第68页 |
