| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-35页 |
| 1.1 引言 | 第9-11页 |
| 1.1.1 荧光探针的概述 | 第9-10页 |
| 1.1.2 基于ESIPT原理的荧光探针 | 第10-11页 |
| 1.2 检测H_2S的荧光探针 | 第11-22页 |
| 1.2.1 检测H_2S的意义 | 第11-12页 |
| 1.2.2 基于R-O键断裂的H_2S探针 | 第12-15页 |
| 1.2.3 基于S-O键断裂的H_2S探针 | 第15-16页 |
| 1.2.4 基于还原性反应的H_2S探针 | 第16-19页 |
| 1.2.5 基于双键加成反应的H_2S探针 | 第19-21页 |
| 1.2.6 基于形成CuS沉淀的H_2S探针 | 第21-22页 |
| 1.3 检测生物硫醇的荧光探针 | 第22-30页 |
| 1.3.1 检测生物硫醇的意义 | 第22页 |
| 1.3.2 基于迈克尔加成反应检测生物硫醇 | 第22-23页 |
| 1.3.3 基于醛的成环反应检测生物硫醇 | 第23-25页 |
| 1.3.4 基于亲核取代反应检测生物硫醇 | 第25-26页 |
| 1.3.5 基于共轭加成环化反应检测生物硫醇 | 第26-27页 |
| 1.3.6 基于磺酰胺和磺酸酯键断裂反应检测生物硫醇 | 第27-29页 |
| 1.3.7 基于其它策略检测生物硫醇 | 第29-30页 |
| 1.4 检测和区分生物硫醇的荧光探针 | 第30-34页 |
| 1.4.1 基于取代反应区分生物硫醇 | 第30-32页 |
| 1.4.2 基于NBD醚的硫解区分生物硫醇 | 第32-34页 |
| 1.5 本文的立题思想 | 第34-35页 |
| 第二章 一种同时检测和区分生物硫醇的荧光探针 | 第35-58页 |
| 2.1 探针的设计思路 | 第35-36页 |
| 2.2 实验部分 | 第36-38页 |
| 2.2.1 实验仪器与试剂 | 第36-37页 |
| 2.2.2 探针的合成与表征 | 第37-38页 |
| 2.2.3 探针光谱性质的研究 | 第38页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第38-57页 |
| 2.3.1 Probe 1对生物硫醇的选择性研究 | 第38-42页 |
| 2.3.2 Probe 1识别生物硫醇的动力学研究 | 第42-43页 |
| 2.3.3 Probe 1识别生物硫醇的紫外光谱和荧光光谱的测试 | 第43-45页 |
| 2.3.4 Probe 1识别生物硫醇的检测限 | 第45-50页 |
| 2.3.5 pH变化对Probe 1识别生物硫醇的影响 | 第50页 |
| 2.3.6 Probe 1识别生物硫醇的机理研究 | 第50-55页 |
| 2.3.7 Probe 1在生物体系中的应用 | 第55-57页 |
| 2.4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第三章 醛基的引入对Probe 1识别生物硫醇的影响 | 第58-84页 |
| 3.1 引言 | 第58-59页 |
| 3.2 实验部分 | 第59-62页 |
| 3.2.1 实验仪器与试剂 | 第59页 |
| 3.2.2 探针的合成与表征 | 第59-61页 |
| 3.2.3 探针光谱性质的研究 | 第61页 |
| 3.2.4 荧光量子产率的研究 | 第61-62页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第62-83页 |
| 3.3.1 Probe2识别H_2S的研究 | 第62-71页 |
| 3.3.2 Probe3识别H_2S的研究 | 第71-83页 |
| 3.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 全文总结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 附录 中间体及探针的表征谱图 | 第93-102页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第102-103页 |
| 致谢 | 第103页 |
