| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-25页 |
| 1.1 灵芝的研究进展 | 第13页 |
| 1.2 灵芝多糖的研究进展 | 第13-23页 |
| 1.2.1 多糖的提取与分离 | 第14-17页 |
| 1.2.2 多糖的分离纯化 | 第17-19页 |
| 1.2.3 多糖结构的表征 | 第19-21页 |
| 1.2.4 多糖的生理活性研究 | 第21-23页 |
| 1.3 本课题立题依据、意义和研究内容 | 第23-25页 |
| 1.3.1 立题依据和意义 | 第23页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 紫芝菌丝体多糖提取工艺的优化 | 第25-35页 |
| 2.1 前言 | 第25页 |
| 2.2 材料与器材 | 第25-26页 |
| 2.2.1 原料 | 第25页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.3.1 紫芝菌丝体基本成分的测定 | 第26页 |
| 2.3.2 紫芝菌丝体多糖的提取总流程 | 第26页 |
| 2.3.3 紫芝菌丝体多糖得率的测定 | 第26-27页 |
| 2.3.4 紫芝菌丝体多糖提取单因素实验优化 | 第27页 |
| 2.3.5 紫芝菌丝体多糖提取正交实验设计 | 第27-28页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第28-34页 |
| 2.4.1 紫芝菌丝体基本成分测定 | 第28页 |
| 2.4.2 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第28-29页 |
| 2.4.4 紫芝菌丝体多糖提取单因素实验分析 | 第29-32页 |
| 2.4.5 紫芝菌丝体多糖提取正交实验分析 | 第32-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 紫芝菌丝体多糖的分离和纯化 | 第35-44页 |
| 3.1 引言 | 第35页 |
| 3.2 材料与器材 | 第35-36页 |
| 3.2.1 原料 | 第35-36页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第36页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-38页 |
| 3.3.1 紫芝菌丝体多糖的提取 | 第36页 |
| 3.3.2 蛋白质标准曲线的绘制和Sevage法除蛋白 | 第36-37页 |
| 3.3.4 离子交换柱分离紫芝菌丝体多糖 | 第37-38页 |
| 3.3.5 凝胶柱纯化分离紫芝菌丝体多糖 | 第38页 |
| 3.3.6 分子量及纯度测定 | 第38页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第38-43页 |
| 3.4.1 Sevage法脱蛋白效果 | 第38-40页 |
| 3.4.2 多糖的离子柱分离纯化结果 | 第40页 |
| 3.4.3 多糖LZa、LZb、LZc的凝胶柱分离纯化结果 | 第40-42页 |
| 3.4.4 紫芝多糖纯度及分子量的测定结果 | 第42-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 紫芝菌丝体多糖的理化性质和结构表征 | 第44-64页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 材料与器材 | 第44-45页 |
| 4.2.1 原料 | 第44页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-48页 |
| 4.3.1 多糖组分与特征试剂的反应 | 第45页 |
| 4.3.2 电子显微镜扫描（SEM） | 第45页 |
| 4.3.3 紫外全波段扫描 | 第45-46页 |
| 4.3.4 红外光谱分析 | 第46页 |
| 4.3.5 单糖组成测定[102] | 第46页 |
| 4.3.6 高碘酸氧化和Smith降解分析 | 第46-47页 |
| 4.3.7 三螺旋结构测定 | 第47页 |
| 4.3.8 核磁共振谱分析 | 第47-48页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第48-62页 |
| 4.4.1 与特征试剂的反应 | 第48页 |
| 4.4.2 电子显微镜扫描（SEM） | 第48-49页 |
| 4.4.3 紫外全波段扫描 | 第49-50页 |
| 4.4.4 红外光谱分析 | 第50-52页 |
| 4.4.5 单糖组成测定 | 第52-54页 |
| 4.4.6 高碘酸氧化和Smith降解分析 | 第54-57页 |
| 4.4.7 三螺旋结构 | 第57-58页 |
| 4.4.8 核磁共振谱分析 | 第58-62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-64页 |
| 第五章 紫芝菌丝体多糖生物活性的研究 | 第64-83页 |
| 5.1 前言 | 第64-65页 |
| 5.2 材料与器材 | 第65-66页 |
| 5.2.1 原料 | 第65页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第65-66页 |
| 5.2.3 主要仪器 | 第66页 |
| 5.3 实验方法 | 第66-68页 |
| 5.3.1 紫芝多糖LZa-1、LZb-1 和LZc-1 免疫调节活性研究 | 第66-67页 |
| 5.3.2 紫芝多糖LZa-1、LZb-1 和LZc-1 抑制红细胞氧化性溶血研究 | 第67-68页 |
| 5.3.3 数据分析 | 第68页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第68-82页 |
| 5.4.1 LZa-1、LZb-1 和LZc-1 对RAW264.7 分泌细胞因子的影响 | 第68-70页 |
| 5.4.2 LZa-1 抗AAPH氧化溶血作用及影响 | 第70-75页 |
| 5.4.3 LZb-1 抗AAPH氧化溶血作用及影响 | 第75-78页 |
| 5.4.4 LZc-1 抗AAPH氧化溶血作用及影响 | 第78-81页 |
| 5.4.5 相同浓度下LZa-1、LZb-1、LZc-1 抗AAPH氧化溶血比较 | 第81-82页 |
| 5.5 本章小结 | 第82-83页 |
| 结果与展望 | 第83-86页 |
| 一、结论 | 第83-85页 |
| 二、创新点 | 第85页 |
| 三、展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-96页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第96-97页 |
| 致谢 | 第97-98页 |
| 附件 | 第98页 |
