摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第13-37页 |
1.1 饮用水污染现状以及微生物在饮用水处理中的应用 | 第13-20页 |
1.2 饮用水处理系统中微生物多样性研究 | 第20-24页 |
1.3 蛋白质组学技术在污染物生物降解中的应用 | 第24-26页 |
1.4 转录组学技术在污染物生物降解中的应用 | 第26-31页 |
1.5 固定化技术在污染物生物降解中的应用 | 第31-34页 |
1.6 本课题研究目的、意义和主要内容 | 第34-37页 |
1.6.1 本课题研究目的和意义 | 第34页 |
1.6.2 本课题研究内容 | 第34-35页 |
1.6.3 本课题技术路线 | 第35-37页 |
第二章 饮用水O_3-活性炭滤池中微生物多样性分析及苯酚降解菌筛选 | 第37-53页 |
2.1 前言 | 第37-38页 |
2.2 材料 | 第38-39页 |
2.2.1 主要仪器 | 第38页 |
2.2.2 主要试剂 | 第38-39页 |
2.2.3 培养基 | 第39页 |
2.3 方法 | 第39-42页 |
2.3.1 样品采集 | 第39页 |
2.3.2 苯酚降解菌群的富集 | 第39-40页 |
2.3.3 活性炭基因组提取 | 第40页 |
2.3.4 活性炭样苯酚驯化前后群落结构分析 | 第40页 |
2.3.5 苯酚降解菌的筛选及降解实验 | 第40-41页 |
2.3.6 苯酚降解关键酶基因的克隆 | 第41页 |
2.3.7 核苷酸序列登录号 | 第41-42页 |
2.4 结果 | 第42-49页 |
2.4.1 苯酚降解菌群的富集 | 第42-43页 |
2.4.2 苯酚驯化前后细菌群落结构分析 | 第43-47页 |
2.4.3 苯酚降解菌的筛选及降解实验 | 第47页 |
2.4.4 苯酚降解关键酶基因分析 | 第47-49页 |
2.5 讨论 | 第49-51页 |
2.5.1 苯酚降解菌群的富集 | 第49页 |
2.5.2 细菌群落结构的解析 | 第49-50页 |
2.5.3 苯酚降解菌的筛选及降解实验 | 第50-51页 |
2.5.4 苯酚降解关键酶基因的克隆 | 第51页 |
2.6 本章小结 | 第51-53页 |
第三章 Acinetobacter sp. DW-1 降解苯酚的组学分析 | 第53-80页 |
3.1 前言 | 第53-54页 |
3.2 材料 | 第54-57页 |
3.2.1 主要仪器 | 第54页 |
3.2.2 主要试剂 | 第54-55页 |
3.2.3 主要试剂和培养基的配置 | 第55-57页 |
3.3 方法 | 第57-61页 |
3.3.0 细菌培养及苯酚降解 | 第57页 |
3.3.1 蛋白提取及定量 | 第57-58页 |
3.3.2 双向电泳实验 | 第58-60页 |
3.3.3 RNA提取与测序 | 第60页 |
3.3.4 转录组数据组装和分析 | 第60页 |
3.3.5 荧光定量PCR | 第60-61页 |
3.4 结果与讨论 | 第61-79页 |
3.4.1 细菌培养及苯酚降解 | 第61-63页 |
3.4.2 蛋白的质谱鉴定 | 第63-69页 |
3.4.3 转录组测序和分析 | 第69-76页 |
3.4.4 荧光定量PCR | 第76页 |
3.4.5 Kegg代谢通路分析 | 第76-79页 |
3.5 本章小结 | 第79-80页 |
第四章 饮用水炭砂滤池中微生物多样性及Rhodococcus sp. CS-1 苯酚降解机理研究 | 第80-98页 |
4.1 前言 | 第80-81页 |
4.2 材料 | 第81-82页 |
4.2.1 主要仪器 | 第81页 |
4.2.2 主要试剂 | 第81-82页 |
4.2.3 培养基 | 第82页 |
4.3 方法 | 第82-85页 |
4.3.1 样品采集、PCR扩增和Illumina MiSeq测序 | 第82页 |
4.3.2 苯酚降解菌的筛选、鉴定及降解实验 | 第82-83页 |
4.3.3 苯酚降解菌固定化研究 | 第83-84页 |
4.3.4 细菌培养及苯酚降解 | 第84页 |
4.3.5 RNA提取、文库构建和测序 | 第84-85页 |
4.4 结果与讨论 | 第85-97页 |
4.4.1 炭砂滤池中微生物多样性研究 | 第85-87页 |
4.4.2 苯酚降解菌的筛选、鉴定及降解实验 | 第87-89页 |
4.4.3 细菌培养及苯酚降解 | 第89-90页 |
4.4.4 苯酚降解菌固定化研究 | 第90-92页 |
4.4.5 转录组数据分析 | 第92-97页 |
4.5 本章小结 | 第97-98页 |
第五章 饮用水砂滤池中微生物多样性分析及氨氧化菌的筛选 | 第98-110页 |
5.1 前言 | 第98页 |
5.2 材料 | 第98-100页 |
5.2.1 主要仪器 | 第98-99页 |
5.2.2 主要试剂和培养基的配置 | 第99-100页 |
5.3 方法 | 第100-103页 |
5.3.1 样品采集 | 第100页 |
5.3.2 砂滤池基因组提取 | 第100-101页 |
5.3.3 氨单加氧酶基因的克隆 | 第101页 |
5.3.4 氨单加氧酶基因荧光定量 | 第101-102页 |
5.3.5 氨单加氧酶基因多样性分析 | 第102页 |
5.3.6 PCR扩增和Illumina MiSeq测序 | 第102页 |
5.3.7 测序数据组装和分析 | 第102页 |
5.3.8 氨氮降解菌群的富集 | 第102页 |
5.3.9 氨氮降解菌的筛选及降解实验 | 第102-103页 |
5.4 结果与讨论 | 第103-109页 |
5.4.1 氨单加氧酶基因的克隆 | 第103-104页 |
5.4.2 氨单加氧酶基因荧光定量 | 第104-106页 |
5.4.3 氨单加氧酶基因多样性分析 | 第106页 |
5.4.4 细菌群落结构分析 | 第106-108页 |
5.4.5 氨氮降解菌的筛选及降解实验 | 第108-109页 |
5.5 本章小结 | 第109-110页 |
第六章 固定化苯酚降解菌在水处理过程中的稳定性研究 | 第110-121页 |
6.1 前言 | 第110页 |
6.2 材料 | 第110-111页 |
6.2.1 主要仪器 | 第110-111页 |
6.2.2 主要试剂和培养基的配置 | 第111页 |
6.3 方法 | 第111-114页 |
6.3.1 苯酚降解菌株DW-1 固定化 | 第111-112页 |
6.3.2 SEM和CLSM观察生物膜 | 第112页 |
6.3.3 生物活性测定 | 第112-113页 |
6.3.4 苯酚降解菌固定化装置的构建 | 第113页 |
6.3.5 固定化装置中水质指标检测 | 第113页 |
6.3.6 多面体空心聚丙烯球基因组提取 | 第113-114页 |
6.3.7 苯酚降解菌稳定性分析 | 第114页 |
6.4 结果与讨论 | 第114-120页 |
6.4.1 SEM和CLSM观察生物膜 | 第114-116页 |
6.4.2 SEM和CLSM观察水处理过程中的生物膜 | 第116-118页 |
6.4.3 固定化装置中水质指标检测 | 第118-119页 |
6.4.4 苯酚降解菌稳定性分析 | 第119-120页 |
6.5 本章小结 | 第120-121页 |
结论与展望 | 第121-125页 |
参考文献 | 第125-152页 |
附录 | 第152-155页 |
攻读博士论文取得的研究成果 | 第155-156页 |
致谢 | 第156-157页 |
附件 | 第157页 |