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饮用水源水中苯酚和氨氮微生物降解机制及生物处理技术研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
第一章 绪论第13-37页
    1.1 饮用水污染现状以及微生物在饮用水处理中的应用第13-20页
    1.2 饮用水处理系统中微生物多样性研究第20-24页
    1.3 蛋白质组学技术在污染物生物降解中的应用第24-26页
    1.4 转录组学技术在污染物生物降解中的应用第26-31页
    1.5 固定化技术在污染物生物降解中的应用第31-34页
    1.6 本课题研究目的、意义和主要内容第34-37页
        1.6.1 本课题研究目的和意义第34页
        1.6.2 本课题研究内容第34-35页
        1.6.3 本课题技术路线第35-37页
第二章 饮用水O_3-活性炭滤池中微生物多样性分析及苯酚降解菌筛选第37-53页
    2.1 前言第37-38页
    2.2 材料第38-39页
        2.2.1 主要仪器第38页
        2.2.2 主要试剂第38-39页
        2.2.3 培养基第39页
    2.3 方法第39-42页
        2.3.1 样品采集第39页
        2.3.2 苯酚降解菌群的富集第39-40页
        2.3.3 活性炭基因组提取第40页
        2.3.4 活性炭样苯酚驯化前后群落结构分析第40页
        2.3.5 苯酚降解菌的筛选及降解实验第40-41页
        2.3.6 苯酚降解关键酶基因的克隆第41页
        2.3.7 核苷酸序列登录号第41-42页
    2.4 结果第42-49页
        2.4.1 苯酚降解菌群的富集第42-43页
        2.4.2 苯酚驯化前后细菌群落结构分析第43-47页
        2.4.3 苯酚降解菌的筛选及降解实验第47页
        2.4.4 苯酚降解关键酶基因分析第47-49页
    2.5 讨论第49-51页
        2.5.1 苯酚降解菌群的富集第49页
        2.5.2 细菌群落结构的解析第49-50页
        2.5.3 苯酚降解菌的筛选及降解实验第50-51页
        2.5.4 苯酚降解关键酶基因的克隆第51页
    2.6 本章小结第51-53页
第三章 Acinetobacter sp. DW-1 降解苯酚的组学分析第53-80页
    3.1 前言第53-54页
    3.2 材料第54-57页
        3.2.1 主要仪器第54页
        3.2.2 主要试剂第54-55页
        3.2.3 主要试剂和培养基的配置第55-57页
    3.3 方法第57-61页
        3.3.0 细菌培养及苯酚降解第57页
        3.3.1 蛋白提取及定量第57-58页
        3.3.2 双向电泳实验第58-60页
        3.3.3 RNA提取与测序第60页
        3.3.4 转录组数据组装和分析第60页
        3.3.5 荧光定量PCR第60-61页
    3.4 结果与讨论第61-79页
        3.4.1 细菌培养及苯酚降解第61-63页
        3.4.2 蛋白的质谱鉴定第63-69页
        3.4.3 转录组测序和分析第69-76页
        3.4.4 荧光定量PCR第76页
        3.4.5 Kegg代谢通路分析第76-79页
    3.5 本章小结第79-80页
第四章 饮用水炭砂滤池中微生物多样性及Rhodococcus sp. CS-1 苯酚降解机理研究第80-98页
    4.1 前言第80-81页
    4.2 材料第81-82页
        4.2.1 主要仪器第81页
        4.2.2 主要试剂第81-82页
        4.2.3 培养基第82页
    4.3 方法第82-85页
        4.3.1 样品采集、PCR扩增和Illumina MiSeq测序第82页
        4.3.2 苯酚降解菌的筛选、鉴定及降解实验第82-83页
        4.3.3 苯酚降解菌固定化研究第83-84页
        4.3.4 细菌培养及苯酚降解第84页
        4.3.5 RNA提取、文库构建和测序第84-85页
    4.4 结果与讨论第85-97页
        4.4.1 炭砂滤池中微生物多样性研究第85-87页
        4.4.2 苯酚降解菌的筛选、鉴定及降解实验第87-89页
        4.4.3 细菌培养及苯酚降解第89-90页
        4.4.4 苯酚降解菌固定化研究第90-92页
        4.4.5 转录组数据分析第92-97页
    4.5 本章小结第97-98页
第五章 饮用水砂滤池中微生物多样性分析及氨氧化菌的筛选第98-110页
    5.1 前言第98页
    5.2 材料第98-100页
        5.2.1 主要仪器第98-99页
        5.2.2 主要试剂和培养基的配置第99-100页
    5.3 方法第100-103页
        5.3.1 样品采集第100页
        5.3.2 砂滤池基因组提取第100-101页
        5.3.3 氨单加氧酶基因的克隆第101页
        5.3.4 氨单加氧酶基因荧光定量第101-102页
        5.3.5 氨单加氧酶基因多样性分析第102页
        5.3.6 PCR扩增和Illumina MiSeq测序第102页
        5.3.7 测序数据组装和分析第102页
        5.3.8 氨氮降解菌群的富集第102页
        5.3.9 氨氮降解菌的筛选及降解实验第102-103页
    5.4 结果与讨论第103-109页
        5.4.1 氨单加氧酶基因的克隆第103-104页
        5.4.2 氨单加氧酶基因荧光定量第104-106页
        5.4.3 氨单加氧酶基因多样性分析第106页
        5.4.4 细菌群落结构分析第106-108页
        5.4.5 氨氮降解菌的筛选及降解实验第108-109页
    5.5 本章小结第109-110页
第六章 固定化苯酚降解菌在水处理过程中的稳定性研究第110-121页
    6.1 前言第110页
    6.2 材料第110-111页
        6.2.1 主要仪器第110-111页
        6.2.2 主要试剂和培养基的配置第111页
    6.3 方法第111-114页
        6.3.1 苯酚降解菌株DW-1 固定化第111-112页
        6.3.2 SEM和CLSM观察生物膜第112页
        6.3.3 生物活性测定第112-113页
        6.3.4 苯酚降解菌固定化装置的构建第113页
        6.3.5 固定化装置中水质指标检测第113页
        6.3.6 多面体空心聚丙烯球基因组提取第113-114页
        6.3.7 苯酚降解菌稳定性分析第114页
    6.4 结果与讨论第114-120页
        6.4.1 SEM和CLSM观察生物膜第114-116页
        6.4.2 SEM和CLSM观察水处理过程中的生物膜第116-118页
        6.4.3 固定化装置中水质指标检测第118-119页
        6.4.4 苯酚降解菌稳定性分析第119-120页
    6.5 本章小结第120-121页
结论与展望第121-125页
参考文献第125-152页
附录第152-155页
攻读博士论文取得的研究成果第155-156页
致谢第156-157页
附件第157页

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