摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7页 |
缩略语表 | 第8-9页 |
1 前言 | 第9-17页 |
1.1 磷脂酶D的分子结构 | 第9-10页 |
1.2 磷脂酶D的生化特性 | 第10-11页 |
1.3 磷脂酶D的亚细胞定位与组织分布表达 | 第11-12页 |
1.4 磷脂酶D在植物逆境胁迫中的作用及其调控机理 | 第12-14页 |
1.5 SOS信号转导途径 | 第14-16页 |
1.6 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
2 材料与方法 | 第17-24页 |
2.1 实验材料 | 第17-19页 |
2.1.1 植物材料、菌株及质粒 | 第17页 |
2.1.2 主要试剂 | 第17页 |
2.1.3 引物信息 | 第17-19页 |
2.1.4 常用仪器 | 第19页 |
2.2 实验方法 | 第19-24页 |
2.2.1 植物基因组总DNA的提取及水稻突变体的分离鉴定 | 第19-20页 |
2.2.2 基因的克隆及载体的构建 | 第20页 |
2.2.3 水稻组织RNA的提取、反转录及基因表达量分析 | 第20-21页 |
2.2.4 植物组织的GUS染色分析 | 第21页 |
2.2.5 植物蛋白的亚细胞定位 | 第21页 |
2.2.6 大肠杆菌原核蛋白表达 | 第21-22页 |
2.2.7 体外酶活分析 | 第22页 |
2.2.8 水稻叶片质膜透性测定 | 第22页 |
2.2.9 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第22-23页 |
2.2.10 水稻各组织钠、钾离子含量的测定 | 第23页 |
2.2.11 大肠杆菌原核重组蛋白与PA的互作分析 | 第23页 |
2.2.12 水稻脂类的提取 | 第23-24页 |
3 结果与分析 | 第24-38页 |
3.1 PLDζ1表达谱分析 | 第24-25页 |
3.2 PLDζ1的GUS染色观察 | 第25页 |
3.3 PLDζ1定位于内质网 | 第25-26页 |
3.4 PLDζ1的酶活性分析 | 第26-29页 |
3.4.1 PLDζ1重组蛋白表达 | 第26-27页 |
3.4.2 PLDζ1在不同条件下的活性分析 | 第27-29页 |
3.5 水稻PLDζ1在盐胁迫下正调控植株的生长 | 第29-33页 |
3.5.1 水稻PLDζ1的缺失导致植物对盐胁迫敏感 | 第29-31页 |
3.5.2 水稻PLDζ1超表达增强植物的耐盐性 | 第31-33页 |
3.6 水稻PLDζ1对盐胁迫下植物体内Na~+和K~+含量的影响 | 第33-34页 |
3.7 PLDζ1活性产生的磷脂酸在盐胁迫反应中的作用 | 第34页 |
3.8 PA与SOS3蛋白的相互作用 | 第34-36页 |
3.9 水稻PLDζ1对钠离子转运相关基因表达的影响 | 第36-37页 |
3.10 PLDζ1对水稻脂质代谢的影响 | 第37-38页 |
4 讨论 | 第38-40页 |
参考文献 | 第40-44页 |
致谢 | 第44页 |