| 中文摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-45页 |
| 1.1 基于石墨烯电化学传感器技术的中药活性组分分析 | 第15-27页 |
| 1.1.1 电化学传感器技术 | 第16-19页 |
| 1.1.2 石墨烯概述 | 第19-23页 |
| 1.1.3 电化学分析技术对中药活性组分的分析 | 第23-25页 |
| 1.1.4 药物运输系统 | 第25-27页 |
| 1.2 基于药物代谢动力学的青娥方复方配伍规律研究 | 第27-33页 |
| 1.2.1 青娥方概述 | 第28-32页 |
| 1.2.2 中药药物代谢动力学 | 第32-33页 |
| 1.3 本论文的立题依据及研究内容 | 第33-37页 |
| 1.3.1 基于石墨烯的电化学传感器技术对中药活性组分的分析及药物运输系统的构建 | 第34-36页 |
| 1.3.2 基于药物代谢动力学的青娥方复方配伍规律研究 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-45页 |
| 第二章 基于石墨烯的电化学传感器技术对中药活性组分的分析及药物运输系统的构建 | 第45-81页 |
| 第一节 紫草素在聚二烯丙基二甲基氯化铵功能化的石墨烯膜修饰的玻碳电极上的电化学行为研究及其应用 | 第45-56页 |
| 1.1 前言 | 第45-46页 |
| 1.2 实验部分 | 第46-47页 |
| 1.2.1 仪器和试剂 | 第46-47页 |
| 1.2.2 PDDA功能化石墨烯的合成 | 第47页 |
| 1.2.3 电化学传感器电极的修饰 | 第47页 |
| 1.2.4 电化学测定方法 | 第47页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第47-55页 |
| 1.3.1 PDDA-GS的表征 | 第48-49页 |
| 1.3.2 紫草素的电化学行为 | 第49-51页 |
| 1.3.3 实验条件的优化 | 第51-54页 |
| 1.3.4 紫草素的测定 | 第54页 |
| 1.3.5 方法学考察(重现性、稳定性及选择性) | 第54-55页 |
| 1.3.6 应用 | 第55页 |
| 1.4 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 第二节 高生物相容性的明胶功能化的石墨烯纳米片的合成及其作为药物载体的药物转运研究 | 第60-77页 |
| 2.1 前言 | 第60-62页 |
| 2.2 实验部分 | 第62-65页 |
| 2.2.1 仪器与材料 | 第62页 |
| 2.2.2 明胶还原石墨烯纳米片(gelatin-GNS)的制备 | 第62-63页 |
| 2.2.3 甲氨蝶呤(MTX)的负载与释放 | 第63页 |
| 2.2.4 药物负载与释放的验证实验(罗丹明6G的负载与释放) | 第63-64页 |
| 2.2.5 细胞成像及细胞毒性实验 | 第64页 |
| 2.2.6 化学表征 | 第64-65页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第65-76页 |
| 2.3.1 gelatin-GNS的表征 | 第65-69页 |
| 2.3.2 甲氨蝶呤(MTX)的负载与释放 | 第69-72页 |
| 2.3.3 药物负载与释放的验证实验(罗丹明6G的负载与释放) | 第72-73页 |
| 2.3.4 细胞成像及细胞毒性实验 | 第73-76页 |
| 2.4 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 第三章 基于药物代谢动力学的青娥方复方配伍规律研究 | 第81-129页 |
| 前言 | 第81-84页 |
| 第一节 杜仲提取物在大鼠血浆中入血指标成分的确立 | 第84-90页 |
| 1.1 前言 | 第84页 |
| 1.2 实验部分 | 第84-87页 |
| 1.2.1 仪器和材料 | 第84-85页 |
| 1.2.2 色谱与质谱条件 | 第85-87页 |
| 1.2.3 杜仲提取物的制备 | 第87页 |
| 1.2.4 给药与血样采集 | 第87页 |
| 1.2.5 血浆样品前处理方法 | 第87页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第87-89页 |
| 1.3.1 18种对照品溶液的UPLC/MS-MS色谱图 | 第87-88页 |
| 1.3.2 入血成分分析 | 第88-89页 |
| 1.4 结论 | 第89-90页 |
| 第二节 基于UPLC-MS/MS技术建立杜仲中五种活性成分在大鼠血浆中的分析方法并用于药物代谢动力学研究 | 第90-103页 |
| 2.1 前言 | 第90页 |
| 2.2 实验部分 | 第90-96页 |
| 2.2.1 仪器和材料 | 第90-91页 |
| 2.2.2 色谱与质谱条件 | 第91-93页 |
| 2.2.3 对照品溶液的配制 | 第93页 |
| 2.2.4 杜仲提取物的制备 | 第93页 |
| 2.2.5 血浆样品前处理方法 | 第93-94页 |
| 2.2.6 方法学考察 | 第94-95页 |
| 2.2.7 方法应用(杜仲提取物在SD雌性及雄性大鼠体内药物代谢动力学比较研究) | 第95-96页 |
| 2.3 结果和讨论 | 第96-102页 |
| 2.3.1 方法学验证 | 第96-98页 |
| 2.3.2 方法应用(杜仲提取物在SD雌性及雄性大鼠体内药物代谢动力学比较研究) | 第98-102页 |
| 2.4 结论 | 第102-103页 |
| 第三节 杜仲提取物中五种指标成分在正常小鼠及卵巢摘除小鼠体内的药物代谢动力学及组织分布比较研究 | 第103-116页 |
| 3.1 前言 | 第103页 |
| 3.2 实验部分 | 第103-106页 |
| 3.2.1 仪器和材料 | 第104页 |
| 3.2.2 色谱与质谱条件 | 第104页 |
| 3.2.3 对照品溶液的配制 | 第104页 |
| 3.2.4 杜仲提取物的制备 | 第104页 |
| 3.2.5 给药与样本(血浆、组织)制备 | 第104-106页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第106-114页 |
| 3.3.1 杜仲提取物中各指标成分的给药剂量 | 第106页 |
| 3.3.2 小鼠灌胃杜仲提取物后的含药血浆及含药组织色谱图 | 第106-108页 |
| 3.3.3 五种指标成分在小鼠血浆及组织中的线性回归方程 | 第108-109页 |
| 3.3.4 正常组与OVX模型组小鼠各指标成分的血浆药物代谢动力学比较 | 第109-111页 |
| 3.3.5 正常组与OVX模型组小鼠各指标成分的组织分布比较 | 第111-114页 |
| 3.4 结论 | 第114-116页 |
| 第四节 青娥方配伍的指标性成分在大鼠体内的药物代谢动力学研究 | 第116-125页 |
| 4.1 前言 | 第116-117页 |
| 4.2 实验部分 | 第117-118页 |
| 4.2.1 仪器与材料 | 第117页 |
| 4.2.2 色谱与质谱条件 | 第117页 |
| 4.2.3 对照品溶液的配制 | 第117页 |
| 4.2.4 青娥方配伍组提取物的制备 | 第117-118页 |
| 4.2.5 给药与血样采集 | 第118页 |
| 4.2.6 血浆样品前处理方法 | 第118页 |
| 4.2.7 数据处理及统计学分析 | 第118页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第118-124页 |
| 4.3.1 青娥方配伍组提取物中各指标成分的给药剂量 | 第118-119页 |
| 4.3.2 大鼠灌胃青娥方配伍组提取物后的含药血浆色谱图 | 第119-120页 |
| 4.3.3 青娥方复方配伍的指标成分在雌性大鼠体内的药物代谢动力学研究 | 第120-124页 |
| 4.4 结论 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-129页 |
| 第四章 总结与展望 | 第129-132页 |
| 4.1 基于电化学传感器技术的中药活性组分分析 | 第129页 |
| 4.2 基于药物代谢动力学的青娥方复方配伍规律研究 | 第129-132页 |
| 在学期间的研究成果 | 第132-133页 |
| 致谢 | 第133页 |
