首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--动物医学(兽医学)论文--兽医基础科学论文--家畜微生物学(兽医病原微生物学)论文--家畜病毒学论文

猪圆环病毒2型-猪瘟病毒共感染细胞的蛋白质组研究

摘要第12-14页
Abstract第14-16页
论文创新点第17-18页
研究意义第18-19页
技术路线第19-20页
第一部分 文献综述第20-76页
    第一章 猪圆环病毒2型研究进展第20-40页
        1 PCV的发现与分类学地位第20-22页
        2 PCV的生物学特性第22-23页
        3 PCV2的基因组结构与编码蛋白第23-32页
            3.1 PCV2的基因组结构第23-25页
            3.2 ORF1基因与Rep、Rep'蛋白第25-27页
            3.3 ORF2基因与Cap蛋白第27-29页
            3.4 ORF3基因与ORF3蛋白第29-31页
            3.5 ORF4基因与ORF4蛋白第31页
            3.6 ORF5基因与ORF5蛋白第31-32页
        4 PCV2生命周期第32-40页
            4.1 PCV2感染宿主第32-33页
            4.2 PCV2的吸附与入侵第33-36页
            4.3 PCV2的运输第36页
            4.4 PCV2 DNA复制和转录第36-40页
    第二章 猪瘟病毒研究进展第40-55页
        1 CSFV的发现与分类学地位第40-41页
        2 CSFV的生物学特性第41-42页
        3 CSFV基因组结构与编码蛋白第42-49页
            3.1 CSFV基因组结构第42-43页
            3.2 CSFV的结构蛋白和非结构蛋白第43-49页
        4 CSFV的生命周期第49-53页
            4.1 CSFV感染宿主第49-50页
            4.2 CSFV的吸附与入侵第50页
            4.3 CSFV基因组复制第50-51页
            4.4 CSFV蛋白翻译第51-52页
            4.5 病毒粒子组装和释放第52-53页
        5 CSFV毒力因子第53-55页
    第三章 猪重要病毒共感染的研究进展第55-59页
        1 猪病毒共感染现状第56页
        2 猪病毒共感染的机制研究第56-59页
    第四章 高通量蛋白质组学研究进展第59-76页
        1 蛋白质组学概述第59页
        2 高通量蛋白质组学研究技术第59-68页
            2.1 Bottom-up蛋白质组学第61-65页
            2.2 Top-down蛋白质组学第65-67页
            2.3 其他新兴的技术第67-68页
        3 蛋白质组学在生命科学研究中的应用第68-76页
            3.1 蛋白质组学在细胞生物学的应用第68-69页
            3.2 蛋白质组学在细胞信号通路的应用第69-70页
            3.3 蛋白质组学在临床诊断的应用第70-71页
            3.4 蛋白质组学在病毒感染研究中的应用第71-76页
第二部分 研究内容第76-168页
    第一章 猪瘟病毒纯化与多抗制备第76-93页
        1 材料第77-78页
            1.1 细胞与实验动物第77页
            1.2 毒株与菌株第77页
            1.3 试剂与抗体第77-78页
            1.4 器材与软件第78页
        2 实验方法第78-85页
            2.1 病毒浓缩第78-79页
            2.2 病毒纯化第79页
            2.3 BCA测定病毒蛋白浓度第79-80页
            2.4 透射电镜观察第80页
            2.5 CSFV绝对定量PCR的建立第80-83页
            2.6 CSFV感染细胞第83页
            2.7 间接免疫荧光检测(IFA)检测病毒TCID_(50)第83-84页
            2.8 抗CSFV兔多抗的制备第84页
            2.9 IFA检测血清效价第84页
            2.10 ELISA检测血清第84-85页
            2.11 数据分析及作图第85页
        3 结果第85-91页
            3.1 CSFV绝对定量PCR的建立第85-86页
            3.2 病毒浓缩和纯化第86-89页
            3.3 抗CSFV兔多抗的IFA效价检测第89-90页
            3.4 抗CSFV兔多抗的ELISA检测第90-91页
        4 讨论第91-93页
    第二章 猪圆环病毒2型与猪瘟病毒共感染模型的建立第93-120页
        1 材料第95-96页
            1.1 细胞第95页
            1.2 毒株与菌株第95页
            1.3 试剂与抗体第95-96页
            1.4 器材与软件第96页
        2 实验方法第96-103页
            2.1 PCV2感染细胞第96-97页
            2.2 CSFV感染细胞第97页
            2.3 IFA测定病毒感染情况及子代病毒TCID_(50)第97页
            2.4 带毒细胞的建立第97页
            2.5 流式细胞术检测细胞感染率第97-98页
            2.6 PCV2绝对定量PCR的建立第98-99页
            2.7 普通激光共聚焦显微镜(CLSM)和超高分辨显微镜(SIM和STORM)第99页
            2.8 CCK-8法检测细胞活性第99-100页
            2.9 相对定量PCR检测CSFV的复制水平第100页
            2.10 TUNEL法检测细胞凋亡第100-101页
            2.11 化学发光法检测Caspase 3/7活性第101页
            2.12 PCV2灭活方法比较第101-102页
            2.13 酚氯仿法抽提病毒DNA第102-103页
            2.14 数据分析及作图第103页
        3 结果第103-117页
            3.1 细胞对病毒的允许性第103-104页
            3.2 恒定感染CSFV的细胞系的建立第104-107页
            3.3 共感染情况下PCV2和CSFV的定位情况第107-110页
            3.4 PCV2和CSFV在PK15和ST中的共感染比例第110-111页
            3.5 PCV2绝对定量PCR的建立第111-112页
            3.6 共感染对病毒复制的影响第112-113页
            3.7 PCV2在PK15-CSFV中介导的凋亡第113-115页
            3.8 PCV2对PK15-CSFV的影响依赖于PCV2的复制第115-117页
        4 讨论第117-120页
    第三章 基于iTRAQ技术的猪圆环病毒2型-猪瘟病毒共感染PK15的蛋白质组分析第120-168页
        1 材料第122-124页
            1.1 细胞第122页
            1.2 毒株与菌株第122-123页
            1.3 试剂与抗体第123页
            1.4 器材与软件第123-124页
        2 实验方法第124-132页
            2.1 样品制备第124页
            2.2 细胞样品的裂解第124页
            2.3 蛋白样品浓度测定第124页
            2.4 SDS-PAGE电泳第124-125页
            2.5 考马斯亮蓝染色第125页
            2.6 Western blotting分析第125-126页
            2.7 酶解和肽段定量第126页
            2.8 肽段标记第126页
            2.9 肽段的SCX分级第126-127页
            2.10 LC-MS/MS分析第127页
            2.11 质谱数据分析第127-129页
            2.12 生物信息学分析第129-130页
            2.13 SYBR green法荧光定量PCR验证差异表达蛋白第130-132页
            2.14 CLSM观察第132页
            2.15 数据分析及作图第132页
        3 实验结果第132-161页
            3.1 样品制备及检测第132-134页
            3.2 肽段标记及SCX分级第134页
            3.3 质谱鉴定结果第134-136页
            3.4 蛋白质的差异表达分析第136-138页
            3.5 差异表达蛋白验证第138-142页
            3.6 蛋白质组的层次聚类分析第142-143页
            3.7 差异表达蛋白的GO分析第143-145页
            3.8 差异表达蛋白的KEGG分析第145-151页
            3.9 PC/SC差异表达蛋白的IPA分析第151-155页
            3.10 PCV2-CSFV共感染下特异性差异表达的蛋白第155-161页
        4 讨论第161-168页
            4.1 PCV2在PCV2-CSFV共感染过程中的主导地位第161-164页
            4.2 PCV2-CSFV共感染特异性差异表达蛋白的分析第164-168页
全文总结第168-170页
展望第170-171页
参考文献第171-200页
第三部分 附录第200-225页
    附录A iTRAQ结合LC-MS/MS鉴定的不同组之间的差异蛋白信息第200-219页
    附录B 全文缩略语第219-221页
    附录C 常用缓冲液及配方第221-225页
致谢第225-227页
作者简历第227页

论文共227页,点击 下载论文
上一篇:肉种鸡饲用甘氨酸铎的母体营养效应及分子机理研究
下一篇:拟穴青蟹蜕皮周期中离子转运相关基因的研究