摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
缩略词表 | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-19页 |
1.1 植物应答涝胁迫的形态机制 | 第12-13页 |
1.1.1 通气组织的形成 | 第12页 |
1.1.2 不定根的形成 | 第12-13页 |
1.2 植物应答涝胁迫的生理生化机制 | 第13-18页 |
1.2.1 能量代谢变化 | 第13页 |
1.2.2 活性氧的变化及调控 | 第13-15页 |
1.2.3 植物激素的应答及调控 | 第15-17页 |
1.2.4 活性氧与植物激素在植物涝胁迫下的响应与协同调控机理 | 第17-18页 |
1.3 研究目的和意义 | 第18-19页 |
第二章 活性氧在黄瓜涝胁迫诱导不定根形成过程中的作用 | 第19-28页 |
2.1 试验材料 | 第19-20页 |
2.1.1 试验材料培养及处理 | 第19页 |
2.1.2 仪器设备 | 第19-20页 |
2.2 试验方法 | 第20-22页 |
2.2.1 活性氧检测 | 第20页 |
2.2.2 样品总RNA提取 | 第20页 |
2.2.3 cDNA的制备 | 第20页 |
2.2.4 实时荧光定量PCR分析 | 第20-21页 |
2.2.5 引物设计与检测 | 第21-22页 |
2.2.6 统计分析 | 第22页 |
2.3 结果与分析 | 第22-26页 |
2.3.1 涝胁迫下黄瓜活性氧组织染色观察 | 第22-24页 |
2.3.2 活性氧对黄瓜涝胁迫下不定根的调控作用 | 第24-25页 |
2.3.3 涝胁迫下黄瓜Csrboh基因的响应 | 第25-26页 |
2.4 讨论 | 第26-28页 |
第三章 乙烯在黄瓜涝胁迫诱导不定根形成过程中的作用 | 第28-37页 |
3.1 试验材料 | 第28页 |
3.1.1 试验材料 | 第28页 |
3.1.2 仪器设备 | 第28页 |
3.2 试验方法 | 第28-31页 |
3.2.1 乙烯释放速率测定 | 第28-29页 |
3.2.2 样品总RNA提取 | 第29页 |
3.2.3 cDNA的制备 | 第29页 |
3.2.4 实时荧光定量PCR分析 | 第29页 |
3.2.5 引物设计与检测 | 第29-30页 |
3.2.6 统计分析 | 第30-31页 |
3.3 结果分析 | 第31-36页 |
3.3.1 涝胁迫下黄瓜乙烯释放速率测定 | 第31页 |
3.3.2 乙烯调控涝胁迫下黄瓜不定根的形成 | 第31-33页 |
3.3.3 涝胁迫下黄瓜Csacs、Csaco基因的响应 | 第33-36页 |
3.4 讨论 | 第36-37页 |
第四章 生长素在黄瓜涝胁迫诱导不定根形成过程中的作用 | 第37-41页 |
4.1 试验材料 | 第37页 |
4.1.1 试验材料处理 | 第37页 |
4.1.2 仪器设备 | 第37页 |
4.2 试验方法 | 第37-38页 |
4.2.1 生长素含量测定 | 第37-38页 |
4.2.2 统计分析 | 第38页 |
4.3 结果分析 | 第38-40页 |
4.3.1 涝胁迫下黄瓜茎部组织IAA含量测定 | 第38-39页 |
4.3.2 生长素调控涝胁迫下黄瓜不定根的形成 | 第39-40页 |
4.4 讨论 | 第40-41页 |
第五章 活性氧、乙烯和生长素在黄瓜涝胁迫诱导不定根形成过程中的协同作用 | 第41-55页 |
5.1 试验材料 | 第41页 |
5.1.1 试验材料处理 | 第41页 |
5.1.2 仪器设备 | 第41页 |
5.2 试验方法 | 第41-42页 |
5.2.1 活性氧检测 | 第41页 |
5.2.2 乙烯释放速率测定 | 第41-42页 |
5.2.3 IAA含量测定 | 第42页 |
5.2.4 样品总RNA提取 | 第42页 |
5.2.5 cDNA的制备 | 第42页 |
5.2.6 实时荧光定量PCR分析 | 第42页 |
5.2.7 引物设计与检测 | 第42页 |
5.2.8 统计分析 | 第42页 |
5.3 结果与分析 | 第42-53页 |
5.3.1 不同处理下黄瓜叶片和茎部组织活性氧组织染色观察 | 第42-44页 |
5.3.2 不同处理下黄瓜乙烯释放速率检测 | 第44-45页 |
5.3.3 不同处理下黄瓜茎部组织IAA含量检测 | 第45-46页 |
5.3.4 不同处理下黄瓜不定根检测 | 第46-49页 |
5.3.5 不同处理下黄瓜Csrboh、Csacs和Csaco基因表达分析 | 第49-53页 |
5.4 讨论 | 第53-55页 |
全文结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-64页 |
致谢 | 第64-65页 |