海藻酸钙/明胶微胶珠的制备及在神经干细胞培养中的应用
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-24页 |
| ·神经干细胞 | 第12-16页 |
| ·神经干细胞的定义 | 第12页 |
| ·NSCs的生物学特性 | 第12-13页 |
| ·NSCs的鉴定 | 第13-14页 |
| ·NSCs的应用前景 | 第14-15页 |
| ·NSCs的培养 | 第15-16页 |
| ·微胶囊/微胶珠 | 第16-22页 |
| ·微胶囊/微胶珠研究进展 | 第16-21页 |
| ·微胶囊/微胶珠制备技术 | 第21-22页 |
| ·本文的选题依据及研究内容 | 第22-24页 |
| 2 海藻酸钙/明胶微胶珠制备及性能检测 | 第24-43页 |
| ·实验材料与仪器 | 第24-26页 |
| ·药品 | 第24-25页 |
| ·仪器 | 第25页 |
| ·溶液配制 | 第25-26页 |
| ·海藻酸钙/明胶微胶珠制备方法 | 第26-27页 |
| ·微胶珠耐穿刺强度实验 | 第27-29页 |
| ·海藻酸钠浓度对机械强度的影响实验 | 第27页 |
| ·明胶浓度对微胶珠机械强度的影响实验 | 第27页 |
| ·CaCl_2浓度对微胶珠机械强度的影响实验 | 第27-28页 |
| ·微胶珠耐穿刺强度检验方法 | 第28-29页 |
| ·微胶珠耐浸泡强度实验 | 第29页 |
| ·静态浸泡 | 第29页 |
| ·动态浸泡 | 第29页 |
| ·微胶珠传质性能实验 | 第29-32页 |
| ·扩散曲线的绘制 | 第30页 |
| ·葡萄糖和BSA浓度的测定 | 第30-31页 |
| ·扩散系数计算 | 第31-32页 |
| ·结果与讨论 | 第32-43页 |
| ·海藻酸钙/明胶微胶珠形态观察 | 第32-33页 |
| ·微胶珠制备条件 | 第33页 |
| ·微胶珠机械强度 | 第33-37页 |
| ·微胶珠静态浸泡实验 | 第37页 |
| ·微胶珠动态浸泡实验 | 第37-38页 |
| ·微胶珠扩散性能实验 | 第38-42页 |
| ·制备参数优化 | 第42-43页 |
| 3 神经干细胞的分离和培养 | 第43-55页 |
| ·实验材料及方法 | 第43-46页 |
| ·实验药品及试剂 | 第43-44页 |
| ·实验动物 | 第44页 |
| ·实验仪器与装置 | 第44页 |
| ·实验所需溶液配制 | 第44-46页 |
| ·实验方法 | 第46-49页 |
| ·NSCs的体外获得及原代培养 | 第46-47页 |
| ·NSCs的传代和继代培养 | 第47-48页 |
| ·NSCs的诱导分化 | 第48页 |
| ·免疫组织化学检测 | 第48-49页 |
| ·细胞生长曲线绘制 | 第49页 |
| ·结果与讨论 | 第49-55页 |
| ·NSCs原代和传代培养 | 第49-51页 |
| ·NSCs的贴附和分化 | 第51-53页 |
| ·NSCs生长曲线 | 第53-55页 |
| 4 神经干细胞的微胶珠包囊培养 | 第55-67页 |
| ·实验材料及方法 | 第55页 |
| ·实验药品及试剂 | 第55页 |
| ·实验仪器 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-58页 |
| ·NSCs的微胶珠包埋 | 第55页 |
| ·包囊密度的确定 | 第55-56页 |
| ·耗氧速率的测定 | 第56页 |
| ·葡糖糖消化速率的测定 | 第56-57页 |
| ·微胶珠内细胞的死活染色 | 第57页 |
| ·细胞收获 | 第57-58页 |
| ·结果与讨论 | 第58-67页 |
| ·神经干细胞包埋前后形态 | 第58-60页 |
| ·最佳包囊密度 | 第60-61页 |
| ·三种培养方式的耗氧速率 | 第61-63页 |
| ·葡萄糖消耗速率测定 | 第63-64页 |
| ·微胶珠内NSCs死活染色 | 第64-65页 |
| ·免疫组化检验 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 附录A 缩略语 | 第72-73页 |
| 附录B 扩散模型MATLAB求解方程 | 第73-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
