| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 主要缩略词 | 第13-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-32页 |
| 1.1 多糖的研究现状 | 第19页 |
| 1.2 茶多糖的研究进展 | 第19-27页 |
| 1.2.1 茶叶中的多糖含量 | 第21-22页 |
| 1.2.2 茶多糖的理化性质 | 第22-23页 |
| 1.2.3 茶多糖的生理活性 | 第23-27页 |
| 1.3 多糖分子结构分析技术 | 第27-30页 |
| 1.3.1 傅里叶红外光谱技术 | 第27-28页 |
| 1.3.2 扫描电镜(SEM) | 第28页 |
| 1.3.3 原子力显微镜(AFM) | 第28-29页 |
| 1.3.4 核磁共振技术 | 第29页 |
| 1.3.5 质谱技术 | 第29-30页 |
| 1.4 本论文研究内容及技术路线 | 第30-32页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第30页 |
| 1.4.2 研究目的 | 第30-31页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第31-32页 |
| 第二章 三种典型乌龙茶多糖理化性质及体外活性研究 | 第32-50页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 材料和方法 | 第32-37页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第32页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第32-33页 |
| 2.2.3 茶多糖的提取 | 第33页 |
| 2.2.4 蛋白含量测定 | 第33页 |
| 2.2.5 中性糖含量测定 | 第33-34页 |
| 2.2.6 糖醛酸含量测定 | 第34页 |
| 2.2.7 气相色谱测定多糖的单糖组成 | 第34-35页 |
| 2.2.8 凝胶色谱层析测定分子量 | 第35页 |
| 2.2.9 红外光谱(IR)分析 | 第35页 |
| 2.2.10 DPPH自由基清除能力测定 | 第35页 |
| 2.2.11 ABTS自由基清除能力测定 | 第35-36页 |
| 2.2.12 铁离子还原能力测定 | 第36页 |
| 2.2.13 对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第36页 |
| 2.2.14 数据处理 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-47页 |
| 2.3.1 化学成分分析 | 第37页 |
| 2.3.2 单糖组分分析 | 第37-39页 |
| 2.3.3 分子量测定 | 第39页 |
| 2.3.4 傅立叶红外光谱分析 | 第39-42页 |
| 2.3.5 DPPH自由基清除能力 | 第42页 |
| 2.3.6 ABTS自由基清除能力 | 第42-44页 |
| 2.3.7 铁离子还原能力(FRAP) | 第44页 |
| 2.3.8 乌龙茶多糖对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第44-45页 |
| 2.3.9 乌龙茶多糖的化学成分与活性的相关性 | 第45-47页 |
| 2.4 讨论与小结 | 第47-49页 |
| 2.4.1 乌龙茶多糖的化学成分 | 第47页 |
| 2.4.2 乌龙茶多糖的分子量 | 第47页 |
| 2.4.3 乌龙茶发酵程度对其活性的影响 | 第47-48页 |
| 2.4.4 乌龙茶多糖的体外抗氧化活性 | 第48-49页 |
| 2.5 小结 | 第49-50页 |
| 第三章 大红袍茶多糖分离纯化、理化性质及体外活性研究 | 第50-66页 |
| 3.1 引言 | 第50页 |
| 3.2 材料和方法 | 第50-54页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第50页 |
| 3.2.3 DTPS的DEAE-纤维素分离纯化 | 第50-51页 |
| 3.2.4 化学成分测定 | 第51页 |
| 3.2.5 HPLC法检测单糖 | 第51-52页 |
| 3.2.6 红外光谱分析 | 第52页 |
| 3.2.7 扫描电子显微镜(SEM)分析 | 第52页 |
| 3.2.8 原子力显微镜(AFM)分析 | 第52页 |
| 3.2.9 体外抗氧化活性评价 | 第52-53页 |
| 3.2.10 对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第53页 |
| 3.2.11 数据处理 | 第53-54页 |
| 3.3 结果与分析 | 第54-63页 |
| 3.3.1 DTPS的DEAE-52纤维素分离纯化 | 第54页 |
| 3.3.2 DTPS分离组分的化学成分分析 | 第54-55页 |
| 3.3.3 DTPS分离组分的单糖组分分析 | 第55-56页 |
| 3.3.4 傅立叶红外光谱分析 | 第56页 |
| 3.3.5 DTPS分离组分的SEM分析 | 第56-58页 |
| 3.3.6 原子力显微镜观察DTPS分离组分分子形貌 | 第58-60页 |
| 3.3.7 DTPS分离组分的抗氧化活性 | 第60-62页 |
| 3.3.8 DTPS分离组分对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第62-63页 |
| 3.4 讨论 | 第63-65页 |
| 3.4.1 阴离子交换剂DEAE纤维素的分离效果 | 第63页 |
| 3.4.2 茶多糖结构分析 | 第63-64页 |
| 3.4.3 茶多糖中蛋白含量对多糖功效的影响 | 第64-65页 |
| 3.5 小结 | 第65-66页 |
| 第四章 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠降血糖活性研究 | 第66-79页 |
| 4.1 引言 | 第66页 |
| 4.2 材料和方法 | 第66-69页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第66页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第66-67页 |
| 4.2.3 建立糖尿病小鼠模型 | 第67页 |
| 4.2.4 餐后血糖测定 | 第67页 |
| 4.2.5 空腹血糖测定 | 第67-68页 |
| 4.2.6 小鼠胰腺组织形态学观察 | 第68页 |
| 4.2.7 数据处理 | 第68-69页 |
| 4.3 结果与分析 | 第69-76页 |
| 4.3.1 四氧嘧啶糖尿病小鼠模型的确定 | 第69页 |
| 4.3.2 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠餐后血糖的影响 | 第69-70页 |
| 4.3.3 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠饮用水的影响 | 第70-72页 |
| 4.3.4 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠体重的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.5 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠空腹血糖的影响 | 第73-74页 |
| 4.3.6 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠胰腺组织的影响 | 第74页 |
| 4.3.7 小鼠胰腺组织病理学观察 | 第74-76页 |
| 4.4 讨论 | 第76-78页 |
| 4.4.1 四氧嘧啶诱导糖尿病模型探讨 | 第76页 |
| 4.4.2 大红袍茶多糖防治糖尿病功效探讨 | 第76-78页 |
| 4.5 小结 | 第78-79页 |
| 第五章 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠体内抗氧化活性研究 | 第79-91页 |
| 5.1 引言 | 第79页 |
| 5.2 材料和方法 | 第79-83页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第79页 |
| 5.2.2 仪器与设备 | 第79页 |
| 5.2.3 实验对象 | 第79-80页 |
| 5.2.4 小鼠血清中MDA含量测定 | 第80页 |
| 5.2.5 小鼠肝脏组织MDA含量测定 | 第80-81页 |
| 5.2.6 小鼠血清中SOD活力测定 | 第81页 |
| 5.2.7 小鼠肝脏组织SOD活力测定 | 第81页 |
| 5.2.8 小鼠血清中GSH-Px活力测定 | 第81-83页 |
| 5.2.9 小鼠肝脏组织中GSH-Px活性 | 第83页 |
| 5.2.10 数据处理 | 第83页 |
| 5.3 结果与分析 | 第83-89页 |
| 5.3.1 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠血清中MDA含量的影响 | 第83-84页 |
| 5.3.2 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠肝脏组织MDA含量的影响 | 第84-85页 |
| 5.3.3 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠血清中SOD活性的影响 | 第85-86页 |
| 5.3.4 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠肝脏组织SOD活性的影响 | 第86-87页 |
| 5.3.5 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠血清中GSH-Px活性的影响 | 第87-88页 |
| 5.3.6 大红袍茶多糖对糖尿病小鼠肝脏组织GSH-Px活性的影响 | 第88-89页 |
| 5.4 讨论 | 第89-90页 |
| 5.5 小结 | 第90-91页 |
| 第六章 总结与展望 | 第91-94页 |
| 6.1 总结 | 第91-92页 |
| 6.2 展望 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-105页 |
| 作者简历 | 第105-106页 |
