| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| 1.1 鱼藤酮的概述及其理化性质 | 第12页 |
| 1.1.1 鱼藤酮的概述 | 第12页 |
| 1.1.2 鱼藤酮的理化性质 | 第12页 |
| 1.2 鱼藤酮的杀虫作用机制 | 第12-13页 |
| 1.3 鱼藤酮引起的帕金森疾病 | 第13-14页 |
| 1.4 鱼藤酮的残留 | 第14-15页 |
| 1.5 肝损伤的氧化损伤机制 | 第15-16页 |
| 1.6 肝损伤与炎症因子的关系 | 第16-19页 |
| 1.6.1 核因子κB | 第16-17页 |
| 1.6.2 环氧合酶和前列腺素E2 | 第17-18页 |
| 1.6.3 肿瘤坏死因子 | 第18页 |
| 1.6.4 一氧化氮和诱导型一氧化氮合酶 | 第18-19页 |
| 1.7 鱼藤酮的其他应用 | 第19页 |
| 1.8 试验的意义 | 第19-21页 |
| 2 材料方法 | 第21-33页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.1 试验药品 | 第21页 |
| 2.1.2 试验器材 | 第21-22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-32页 |
| 2.2.1 试验动物的饲养 | 第22页 |
| 2.2.2 试验动物的分组及模型制备方法 | 第22-23页 |
| 2.2.3 试验动物行为观察及样品的采集 | 第23页 |
| 2.2.4 氧化抗氧化指标的测定 | 第23-26页 |
| 2.2.5 肝脏组织中各基因mRNA水平表达情况检测 | 第26-28页 |
| 2.2.6 免疫印迹检测相关蛋白表达情况 | 第28-31页 |
| 2.2.7 组织病理学观察 | 第31-32页 |
| 2.3 数据统计方法 | 第32-33页 |
| 3 试验结果 | 第33-44页 |
| 3.1 鱼藤酮对大鼠血液生化指标的检测结果 | 第33-34页 |
| 3.1.1 血清中AST活性的检测结果 | 第33页 |
| 3.1.2 血清中ALT活性的检测结果 | 第33-34页 |
| 3.2 肝脏组织中氧化应激指标的检测结果 | 第34-37页 |
| 3.2.1 肝脏组织中SOD活性的检测结果 | 第34页 |
| 3.2.2 肝脏组织中CAT的检测结果 | 第34-35页 |
| 3.2.3 肝脏组织中GSH-Px活性检测结果 | 第35-36页 |
| 3.2.4 肝脏组织中MDA含量的检测结果 | 第36页 |
| 3.2.5 肝脏组织中NO的检测结果 | 第36-37页 |
| 3.3 鱼藤酮对大鼠肝脏组织相关基因mRNA水平表达的检测结果 | 第37-40页 |
| 3.3.1 鱼藤酮对大鼠肝脏NF-κB mRNA水平表达的检测结果 | 第37-38页 |
| 3.3.2 鱼藤酮对大鼠肝脏COX-2 mRNA水平表达的检测结果 | 第38页 |
| 3.3.3 鱼藤酮对大鼠肝脏TNF-α mRNA水平表达的检测结果 | 第38-39页 |
| 3.3.4 鱼藤酮对大鼠肝脏iNOS mRNA水平表达的检测结果 | 第39页 |
| 3.3.5 鱼藤酮对大鼠肝脏PGE_2 mRNA水平表达的检测结果 | 第39-40页 |
| 3.4 鱼藤酮对大鼠肝脏组织相关基因蛋白表达的检测结果 | 第40-42页 |
| 3.4.1 鱼藤酮对大鼠肝脏组织中NF-κB的蛋白表达水平的检测结果 | 第40-41页 |
| 3.4.2 鱼藤酮对大鼠肝脏组织中COX-2的蛋白表达水平的检测结果 | 第41-42页 |
| 3.5 鱼藤酮对大鼠肝脏组织损伤后的组织病理学结果 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-49页 |
| 4.1 鱼藤酮对大鼠生化指标的影响 | 第44页 |
| 4.2 鱼藤酮对大鼠肝脏氧化应激的影响 | 第44-45页 |
| 4.3 鱼藤酮对大鼠肝脏组织学水平的影响 | 第45-46页 |
| 4.4 鱼藤酮对大鼠肝脏炎症的影响 | 第46-49页 |
| 4.4.1 鱼藤酮对NF-κB的影响 | 第46-47页 |
| 4.4.2 鱼藤酮对COX-2和PGE_2的影响 | 第47页 |
| 4.4.3 鱼藤酮对TNF-α的影响 | 第47页 |
| 4.4.4 鱼藤酮对NO和iNOS的影响 | 第47-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第60页 |
