| 中文摘要 | 第8-15页 |
| 英文摘要 | 第15-22页 |
| 第一部分 XRCC5作为COX-2 启动子区结合蛋白调控结肠癌细胞中COX-2 表达 | 第23-53页 |
| （一）前言 | 第23-25页 |
| （二）材料和方法 | 第25-39页 |
| 1.主要试剂及试剂盒 | 第25-27页 |
| 2.主要仪器 | 第27-28页 |
| 3.实验方法 | 第28-39页 |
| 4.数据统计和分析 | 第39页 |
| （三）结果 | 第39-44页 |
| 1.生物素-链霉亲和素垂钓实验鉴定COX-2 启动子区结合蛋白 | 第39-40页 |
| 2.结肠癌细胞中XRCC5及COX2表达情况 | 第40-41页 |
| 3.免疫荧光定位实验对XRCC5进行细胞微结构定位 | 第41-42页 |
| 4.XRCC5对COX-2 启动子区活性的调控作用 | 第42-44页 |
| 5.XRCC5影响COX-2 蛋白水平 | 第44页 |
| （四）讨论 | 第44-48页 |
| （五）结论 | 第48页 |
| （六）参考文献 | 第48-53页 |
| 第二部分 转录共活化子p300通过乙酰化XRCC5协同调控结肠癌细胞中COX-2 表达 | 第53-75页 |
| （一）前言 | 第53-55页 |
| （二）材料和方法 | 第55-64页 |
| 1.主要试剂及试剂盒 | 第55-56页 |
| 2.主要仪器 | 第56-57页 |
| 3.实验方法 | 第57-64页 |
| 4.数据统计和分析 | 第64页 |
| （三）结果 | 第64-68页 |
| 1.免疫共沉淀实验鉴定XRCC5与p300的相互作用 | 第64-65页 |
| 2.免疫荧光定位实验对XRCC5及p300进行细胞微结构定位 | 第65页 |
| 3.结肠癌细胞中p300乙酰化XRCC5调节XRCC5乙酰化水平 | 第65-67页 |
| 4.结肠癌细胞中p300乙酰化功能对COX-2 表达水平的调控 | 第67-68页 |
| （四）讨论 | 第68-71页 |
| （五）结论 | 第71页 |
| （六）参考文献 | 第71-75页 |
| 第三部分 XRCC5及p300协同调控COX-2 表达促进结肠癌细胞增殖 | 第75-101页 |
| （一）前言 | 第75-77页 |
| （二）材料和方法 | 第77-87页 |
| 1.主要试剂及试剂盒 | 第77-78页 |
| 2.主要仪器 | 第78-79页 |
| 3.实验方法 | 第79-87页 |
| 4.数据统计和分析 | 第87页 |
| （三）结果 | 第87-94页 |
| 1.siRNA转染细胞敲低XRCC5抑制结肠癌细胞生长 | 第87-89页 |
| 2.转染XRCC5过表达质粒促进结肠癌细胞生长 | 第89-90页 |
| 3.p300与XRCC5协同调控结肠癌细胞生长 | 第90-92页 |
| 4.小鼠成瘤实验验证XRCC5通过调控COX-2 影响结肠癌生长 | 第92-94页 |
| （四）讨论 | 第94-96页 |
| （五）结论 | 第96页 |
| （六）参考文献 | 第96-101页 |
| 综述 结直肠癌的治疗靶点COX-2 的研究进展 | 第101-124页 |
| 参考文献 | 第113-124页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第124-125页 |
| 致谢 | 第125-126页 |
