| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第15-18页 |
| 前言 | 第18-21页 |
| 研究现状、成果 | 第18-20页 |
| 研究目的、方法 | 第20-21页 |
| 一、右美托咪定对切口痛一瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓NMDA受体亚基表达及运输的影响 | 第21-51页 |
| 1.1 对象和方法 | 第21-35页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第21-24页 |
| 1.1.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 1.1.1.2 实验仪器及耗材 | 第21-22页 |
| 1.1.1.3 实验试剂 | 第22-23页 |
| 1.1.1.4 主要实验试剂的制备 | 第23-24页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第24-35页 |
| 1.1.2.1 大鼠尾静脉穿刺置管 | 第24-25页 |
| 1.1.2.2 实验动物分组 | 第25页 |
| 1.1.2.3 大鼠切口痛模型的建立 | 第25-26页 |
| 1.1.2.4 大鼠行为学测试 | 第26-27页 |
| 1.1.2.5 Western Blot法检测右美托咪定对瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓NMDA受体亚基表达的影响 | 第27-31页 |
| 1.1.2.6 Western Blot法检测右美托咪定对瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓NMDA受体亚基运输的影响 | 第31页 |
| 1.1.2.7 免疫组化法检测右美托咪定对瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓背角NMDA受体亚基表达的影响 | 第31-35页 |
| 1.1.2.8 统计学分析 | 第35页 |
| 1.2 结果 | 第35-42页 |
| 1.2.1 大鼠疼痛行为学的变化 | 第35-37页 |
| 1.2.2 各组大鼠脊髓NMDA受体NR1、NR2A和NR2B亚基的表达及运输 | 第37-39页 |
| 1.2.3 各组大鼠脊髓背角NMDA受体NR1、NR2A和NR2B亚基的表达 | 第39-42页 |
| 1.3 讨论 | 第42-50页 |
| 1.3.1 瑞芬太尼可诱发痛觉过敏 | 第42页 |
| 1.3.2 瑞芬太尼痛觉过敏的实验依据 | 第42页 |
| 1.3.3 右美托咪定的理化性质 | 第42-43页 |
| 1.3.4 右美托咪定预防瑞芬太尼痛觉过敏的临床证据 | 第43页 |
| 1.3.5 动物模型的建立 | 第43-45页 |
| 1.3.5.1 尾静脉置管 | 第43-44页 |
| 1.3.5.2 切口痛模型的选择 | 第44页 |
| 1.3.5.3 药物输注剂量的选择 | 第44-45页 |
| 1.3.5.4 研究时间点的选择 | 第45页 |
| 1.3.5.5 行为学测试 | 第45页 |
| 1.3.6 行为学结果讨论 | 第45-46页 |
| 1.3.7 NMDA受体亚基的表达及运输 | 第46-48页 |
| 1.3.7.1 NMDA受体的结构及组成 | 第46页 |
| 1.3.7.2 NMDA受体的分布 | 第46-47页 |
| 1.3.7.3 NMDA受体亚基的表达及运输 | 第47页 |
| 1.3.7.4 NMDA受体亚基的表达及运输与OIH的关系 | 第47-48页 |
| 1.3.8 右美托咪定对瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓NMDA受体亚基表达及运输的影响及相关机制 | 第48-50页 |
| 1.4 小结 | 第50-51页 |
| 二、右美托咪定对瑞芬太尼孵育脊髓切片NMDA受体功能的影响 | 第51-62页 |
| 2.1 对象和方法 | 第51-57页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第51-52页 |
| 2.1.1.1 实验动物 | 第51页 |
| 2.1.1.2 实验仪器及耗材 | 第51页 |
| 2.1.1.3 实验试剂 | 第51-52页 |
| 2.1.1.4 主要实验试剂的制备 | 第52页 |
| 2.1.1.5 计算机软件 | 第52页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第52-57页 |
| 2.1.2.1 实验动物分组 | 第52-53页 |
| 2.1.2.2 琼脂块的制备 | 第53页 |
| 2.1.2.3 标本的采集 | 第53页 |
| 2.1.2.4 切片的制备 | 第53-54页 |
| 2.1.2.5 玻璃电极的制备 | 第54-55页 |
| 2.1.2.6 膜片钳记录 | 第55-57页 |
| 2.1.2.7 数据的采集 | 第57页 |
| 2.1.2.8 数据分析 | 第57页 |
| 2.1.2.9 统计学分析 | 第57页 |
| 2.2 结果 | 第57-59页 |
| 2.2.1 右美托咪定对瑞芬太尼孵育脊髓切片背角神经元NMDA受体介导的mEPSCs的影响 | 第57-59页 |
| 2.3 讨论 | 第59-61页 |
| 2.3.1 全细胞膜片钳技术原理 | 第59页 |
| 2.3.2 神经突触传递过程 | 第59-60页 |
| 2.3.3 NMDA受体亚基对电生理功能的影响 | 第60页 |
| 2.3.4 右美托咪定对NMDA功能的影响及相关机制 | 第60-61页 |
| 2.4 小结 | 第61-62页 |
| 三、右美托咪定对切口痛一瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓PKCγ、CaMKⅡα表达及磷酸化的影响 | 第62-73页 |
| 3.1 对象和方法 | 第62-64页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第62页 |
| 3.1.1.1 实验动物 | 第62页 |
| 3.1.1.2 实验仪器及耗材 | 第62页 |
| 3.1.1.3 实验试剂 | 第62页 |
| 3.1.1.4 主要实验试剂的制备 | 第62页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第62-64页 |
| 3.1.2.1 大鼠尾静脉穿刺置管 | 第62页 |
| 3.1.2.2 大鼠鞘内置管 | 第62-63页 |
| 3.1.2.3 实验动物分组 | 第63页 |
| 3.1.2.4 大鼠切口痛模型的建立 | 第63页 |
| 3.1.2.5 大鼠行为学测试 | 第63页 |
| 3.1.2.6 标本的采集 | 第63页 |
| 3.1.2.7Western Blot法检测右美托咪定对瑞芬太尼痛觉过敏大鼠脊髓PKCγ、Ca MKⅡα表达及磷酸化的影响 | 第63页 |
| 3.1.2.8 统计学分析 | 第63-64页 |
| 3.2 结果 | 第64-68页 |
| 3.2.1 大鼠疼痛行为学的变化 | 第64-66页 |
| 3.2.2 右美托咪定对痛觉过敏大鼠脊髓PKCγ表达的影响 | 第66页 |
| 3.2.3 右美托咪定对痛觉过敏大鼠脊髓Ca MKⅡα表达及磷酸化的影响 | 第66-68页 |
| 3.3 讨论 | 第68-72页 |
| 3.3.1 行为学结果讨论 | 第68页 |
| 3.3.2 PKC与CaMKⅡ之间的联系 | 第68-70页 |
| 3.3.3 瑞芬太尼痛觉过敏与PKCγ、CaMKⅡα表达及磷酸化 | 第70-71页 |
| 3.3.4 右美托咪定调控PKCγ、CaMKⅡα表达及磷酸化 | 第71-72页 |
| 3.4 小结 | 第72-73页 |
| 全文结论 | 第73-74页 |
| 论文创新点 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-88页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第88-90页 |
| 综述 右美托咪定对瑞芬太尼痛觉过敏的影响及机制研究进展 | 第90-100页 |
| 综述参考文献 | 第94-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
| 个人简历 | 第101页 |
