| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略语 | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 第一章 胃肠道疾病概况 | 第18-20页 |
| 1.1 结直肠癌发病率、转移情况的概述 | 第18页 |
| 1.2 结直肠癌肝转移机制研究概述 | 第18-19页 |
| 1.3 结直肠炎症与结直肠癌的关系及目前诊断方法的概论 | 第19-20页 |
| 第二章 结直肠癌肝转移裸鼠模型的构建 | 第20-24页 |
| 2.1 概述 | 第20页 |
| 2.2 材料与方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22页 |
| 2.4 讨论 | 第22-23页 |
| 2.5 版图与说明 | 第23-24页 |
| 第三章 Exosomes的提取和鉴定 | 第24-30页 |
| 3.1 概述 | 第24页 |
| 3.2 材料与方法 | 第24-28页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 3.3 实验结果 | 第28-29页 |
| 3.4 讨论 | 第29页 |
| 3.5 版图与说明 | 第29-30页 |
| 第四章 Exosomes在结直肠癌肝转移中的作用 | 第30-42页 |
| 4.1 概述 | 第30-31页 |
| 4.2 材料与方法 | 第31-35页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第31页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第31-35页 |
| 4.3 实验结果 | 第35-37页 |
| 4.3.1 HT-29细胞分泌的exosomes对Caco-2细胞肝转移能力的影响 | 第35-36页 |
| 4.3.2 HT-29细胞分泌的exosomes对Caco-2裸鼠模型肝脏转移微环塊处CXCR4表达量的影响 | 第36页 |
| 4.3.3 肿瘤细胞分泌的exosomes对Caco-2细胞体外迁移能力的影响 | 第36页 |
| 4.3.4 EXO(HT-29)和EXO(caco-2)所携带microRNA的microarry表达图谱分析 | 第36-37页 |
| 4.4 讨论 | 第37-38页 |
| 4.5 版图与说明 | 第38-42页 |
| 第五章 CXCR4表达量在结直肠癌肝转移中的作用 | 第42-50页 |
| 5.1 概述 | 第42-43页 |
| 5.2 材料与方法 | 第43-44页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第43页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第43-44页 |
| 5.3 实验结果 | 第44-46页 |
| 5.3.1 HT-29细胞分泌的exosomes对Caco-2细胞CXCR4表达量的影响 | 第44-45页 |
| 5.3.2 HT-29细胞与Caco-2细胞的CXCR4表达量差异 | 第45页 |
| 5.3.3 SDF-1在HT-29细胞迁移过程中的作用 | 第45页 |
| 5.3.4 构建CXCR4表达量降低的HT-29稳定细胞系 | 第45页 |
| 5.3.5 CXCR4表达量降低的HT-29细胞系肝转移能力没有明显变化 | 第45-46页 |
| 5.4 讨论 | 第46-47页 |
| 5.5 版图与说明 | 第47-50页 |
| 第六章 结直肠炎症影像学的研究 | 第50-58页 |
| 6.1 概述 | 第50页 |
| 6.2 材料与方法 | 第50-53页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第50-51页 |
| 6.2.2 实验方法 | 第51-53页 |
| 6.3 实验结果 | 第53-54页 |
| 6.3.1 药物Gd-DTPA-SLN的使用浓度确定 | 第53页 |
| 6.3.2 Caco-2细胞单层膜模型及炎症模型的构建 | 第53页 |
| 6.3.3 Gd-DTPA-SLN在炎症情况下渗透率变化 | 第53页 |
| 6.3.4 炎症因子引发紧密连接蛋白ZO-1的表达量降低 | 第53-54页 |
| 6.3.5 炎症因子对细胞药物吸收率的影响 | 第54页 |
| 6.4 讨论 | 第54-55页 |
| 6.5 版图与说明 | 第55-58页 |
| 第七章 本文总结和展望 | 第58-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
