南极磷虾的除氟及高值化产物的制备
摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第一章 引言 | 第13-18页 |
1.1 南极磷虾概述 | 第13页 |
1.2 除氟的研究进展 | 第13-14页 |
1.3 甲壳素与壳聚糖的结构与性质 | 第14-15页 |
1.3.1 甲壳素的结构与性质 | 第14-15页 |
1.3.2 壳聚糖的结构与性质 | 第15页 |
1.4 壳寡糖的概述 | 第15-16页 |
1.4.1 壳寡糖的结构与性质 | 第15-16页 |
1.4.2 壳寡糖的制备 | 第16页 |
1.5 本论文的研究内容和创新点 | 第16-18页 |
1.5.1 本论文研究内容 | 第16-17页 |
1.5.2 创新点 | 第17-18页 |
第二章 改性竹炭对南极磷虾酶解液除氟效果的研究 | 第18-30页 |
2.1 前言 | 第18页 |
2.2 材料 | 第18-19页 |
2.2.1 主要实验原料和试剂 | 第18-19页 |
2.2.2 主要仪器与设备 | 第19页 |
2.3 实验方法 | 第19-21页 |
2.3.1 样品预处理 | 第19-20页 |
2.3.2 氟含量测定 | 第20页 |
2.3.3 蛋白含量测定 | 第20页 |
2.3.4 南极磷虾酶解液的制备 | 第20-21页 |
2.3.5 改性竹炭对氟的吸附实验 | 第21页 |
2.4 结果与讨论 | 第21-29页 |
2.4.1 磷虾各部位氟离子测定 | 第21-22页 |
2.4.2 南极磷虾酶解液中氟含量的测定 | 第22页 |
2.4.3 南极磷虾酶解产物中氟含量的影响 | 第22-25页 |
2.4.4 竹炭颗粒大小对除氟效果的影响 | 第25页 |
2.4.5 吸附时间对竹炭除氟效果的影响 | 第25-26页 |
2.4.6 pH对竹炭除氟效果的影响 | 第26-27页 |
2.4.7 温度对竹炭除氟效果的影响 | 第27-28页 |
2.4.8 吸附剂投入量对竹炭除氟效果的影响 | 第28-29页 |
2.5 实验结论 | 第29-30页 |
第三章 改性竹炭对南极磷虾酶解液除氟原理的研究 | 第30-38页 |
3.1 前言 | 第30页 |
3.2 材料 | 第30-32页 |
3.2.1 主要实验材料 | 第30-31页 |
3.2.2 主要仪器与设备 | 第31-32页 |
3.3 实验方法 | 第32-33页 |
3.3.1 样品预处理 | 第32页 |
3.3.2 南极磷虾酶解液的制备 | 第32页 |
3.3.3 吸附等温方程 | 第32页 |
3.3.4 热力学参数分析 | 第32页 |
3.3.5 吸附动力学分析 | 第32页 |
3.3.6 颗粒内扩散模型 | 第32-33页 |
3.3.7 FTIR分析 | 第33页 |
3.4 结果与讨论 | 第33-37页 |
3.4.1 氟离子吸附实验 | 第33页 |
3.4.2 吸附等温方程 | 第33-34页 |
3.4.3 热力学参数 | 第34页 |
3.4.4 吸附动力学研究 | 第34-36页 |
3.4.5 傅立叶转换红外光谱仪扫描分析 | 第36-37页 |
3.5 实验结论 | 第37-38页 |
第四章 利用南极磷虾酶解残渣制备壳聚糖 | 第38-50页 |
4.1 前言 | 第38页 |
4.2 材料 | 第38-39页 |
4.2.1 主要实验材料 | 第38-39页 |
4.2.2 主要仪器与设备 | 第39页 |
4.3 实验方法 | 第39-41页 |
4.3.1 南极磷虾酶解液残渣制备 | 第39页 |
4.3.2 石油醚脱脂 | 第39页 |
4.3.3 探究最佳脱钙方法 | 第39-40页 |
4.3.4 探究最佳脱蛋白方法 | 第40页 |
4.3.5 壳聚糖的制备 | 第40页 |
4.3.6 脱乙酰度测定 | 第40-41页 |
4.3.7 脱色方法 | 第41页 |
4.3.8 产品质量指标检测 | 第41页 |
4.4 结果与讨论 | 第41-49页 |
4.4.1 柠檬酸浓度对脱钙效果的影响 | 第41-42页 |
4.4.2 料液比对脱钙效果的影响 | 第42-43页 |
4.4.3 反应时间对脱钙效果的影响 | 第43-44页 |
4.4.4 确定最佳脱钙条件 | 第44页 |
4.4.5 确定最佳脱蛋白条件 | 第44-45页 |
4.4.6 甲壳素得率 | 第45-46页 |
4.4.7 制备壳聚糖工艺条件探究 | 第46-48页 |
4.4.8 产品质量指标测定 | 第48-49页 |
4.5 实验结论 | 第49-50页 |
第五章 利用南极磷虾酶解残渣制备壳寡糖 | 第50-62页 |
5.1 前言 | 第50页 |
5.2 材料 | 第50-52页 |
5.2.1 主要实验材料 | 第50-51页 |
5.2.2 主要仪器与设备 | 第51-52页 |
5.3 实验方法 | 第52-55页 |
5.3.1 NAG标准曲线的绘制 | 第52页 |
5.3.2 壳聚糖酶酶活力的测定 | 第52-53页 |
5.3.3 壳聚糖酶最佳酶解条件的确定 | 第53页 |
5.3.4 纤维素酶酶活力的测定 | 第53-54页 |
5.3.5 纤维素酶最佳酶解条件的确定 | 第54页 |
5.3.6 低聚合度壳寡糖的制备 | 第54页 |
5.3.7 酶解产物薄层色谱的分析 | 第54-55页 |
5.3.8 酶解时间对产物聚合度的影响分析 | 第55页 |
5.4 结果与讨论 | 第55-61页 |
5.4.1 制作NAG标准曲线 | 第55-56页 |
5.4.2 壳聚糖酶最佳酶解条件的探究 | 第56页 |
5.4.3 纤维素酶酶解效果的探究 | 第56-57页 |
5.4.4 低聚合度壳寡糖的制备 | 第57-58页 |
5.4.5 酶解产物薄层色谱的分析 | 第58-59页 |
5.4.6 酶解时间对酶解产物聚合度的影响 | 第59-61页 |
5.5 实验结论 | 第61-62页 |
第六章 结论与展望 | 第62-64页 |
6.1 结论 | 第62-63页 |
6.2 展望 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
作者在攻读硕士学位期间发表的学术论文及成果 | 第70页 |