| 中英文缩略词对照 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.1.2 实验虫株 | 第14页 |
| 2.1.3 实验细胞 | 第14-15页 |
| 2.1.4 实验主要试剂 | 第15页 |
| 2.1.5 实验主要试剂的配置 | 第15-18页 |
| 2.1.6 实验主要仪器 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-28页 |
| 2.2.1 弓形虫在小鼠体内的复苏、传代、收集和冻存 | 第18-19页 |
| 2.2.2 C17.2 神经干细胞的复苏、传代、冻存 | 第19-20页 |
| 2.2.3 弓形虫RH株感染C17.2 神经干细胞排泄分泌抗原的收集 | 第20-21页 |
| 2.2.4 C17.2 神经干细胞特征性标志蛋白(Nestin)的鉴定 | 第21-23页 |
| 2.2.5 RT-PCR法检测不同诱导条件C17.2 神经干细胞分化中基因的转录 | 第23-24页 |
| 2.2.6 免疫印迹法和免疫荧光法检测ESAs对神经干细胞分化中蛋白表达的影响 | 第24-27页 |
| 2.2.7 免疫印迹检测Wnt信号通路中相关蛋白的表达 | 第27-28页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-38页 |
| 3.1 神经干细胞特异性标志Nestin基因在C17.2 细胞内转录、表达 | 第28-30页 |
| 3.2 C17.2 神经干细胞分化条件的优化 | 第30-32页 |
| 3.3 ESAs抑制C17.2 神经干细胞分化 | 第32-36页 |
| 3.3.1 ESAs抑制神经元特异标志蛋白 βⅢ-tubulin和星形胶质细胞特异标志蛋白GFAP的表达 | 第32-34页 |
| 3.3.2 ESAs对 βⅢ-tubulin、GFAP表达的抑制呈剂量依赖性 · 293.4 ESAs抑制Wnt信号通路活性 | 第34-36页 |
| 3.4 ESAs 抑制 Wnt 信号通路活性 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-39页 |
| 5 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 附一 个人简历 | 第44-45页 |
| 附二 致谢 | 第45-46页 |
| 附三 综述 | 第46-53页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
