| 缩略词表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1.1 蛋白印迹分析法在体内药物作用研究的应用 | 第10-11页 |
| 1.2 黄酮类金属配合物生物活性研究进展 | 第11-16页 |
| 1.2.1 抗菌活性 | 第11-12页 |
| 1.2.2 抗病毒活性 | 第12页 |
| 1.2.3 抗肿瘤活性 | 第12-14页 |
| 1.2.4 抗炎活性 | 第14页 |
| 1.2.5 降血糖作用 | 第14-15页 |
| 1.2.6 自由基清除活性 | 第15页 |
| 1.2.7 抗溃疡 | 第15-16页 |
| 1.2.8 小结与展望 | 第16页 |
| 1.3 黄芩苷及其金属配合物生物活性研究进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 黄芩苷概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 黄芩苷的一般结构修饰 | 第17页 |
| 1.3.3 黄芩苷金属配合物及其生物活性 | 第17-20页 |
| 1.3.4 小结与展望 | 第20页 |
| 1.4 PI3K/Akt信号通路在肝癌中的研究进展 | 第20-24页 |
| 1.4.1 PI3K/Akt信号通路和作用机制 | 第20-21页 |
| 1.4.2 PI3K/Akt/mTOR信号通路与肝癌的治疗 | 第21-22页 |
| 1.4.3 小结与展望 | 第22-24页 |
| 第2章 引言 | 第24-26页 |
| 第3章 黄芩苷及黄芩苷铜对人肝癌细胞裸鼠移植瘤的抑制作用 | 第26-32页 |
| 3.1 材料 | 第26页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第26页 |
| 3.1.2 动物 | 第26页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第26页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第26页 |
| 3.2 方法 | 第26-27页 |
| 3.2.1 细胞培养体系 | 第26-27页 |
| 3.2.2 裸鼠皮下移植瘤模型的建立 | 第27页 |
| 3.2.3 动物分组 | 第27页 |
| 3.2.4 瘤体积及重量测量 | 第27页 |
| 3.3 统计学分析 | 第27页 |
| 3.4 实验结果 | 第27-29页 |
| 3.4.1 黄芩苷及黄芩苷铜对人HepG-2裸鼠移植瘤的抑制作用 | 第27-29页 |
| 3.5 讨论 | 第29-30页 |
| 3.6 小结 | 第30-32页 |
| 第4章 基于细胞凋亡相关蛋白的黄芩苷铜抗HepG-2增殖的免疫印迹分析 | 第32-54页 |
| 4.1 材料 | 第32-35页 |
| 4.1.1 细胞株来源 | 第32页 |
| 4.1.2 化合物 | 第32页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第32页 |
| 4.1.4 主要器材与仪器 | 第32-33页 |
| 4.1.5 试剂的配制 | 第33-35页 |
| 4.2 方法 | 第35-38页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第35页 |
| 4.2.2 细胞增殖实验 | 第35页 |
| 4.2.3 荧光显微镜观察细胞凋亡和坏死 | 第35页 |
| 4.2.4 Annexin V-FITC/PI双标法检测细胞凋亡 | 第35-36页 |
| 4.2.5 流式细胞仪分析细胞周期变化 | 第36页 |
| 4.2.6 细胞总蛋白的提取 | 第36页 |
| 4.2.7 细胞蛋白浓度测定 | 第36-37页 |
| 4.2.8 western blot分析相关蛋白表达变化 | 第37-38页 |
| 4.3 统计学分析 | 第38页 |
| 4.4 实验结果 | 第38-50页 |
| 4.4.1 黄芩苷铜对HepG-2细胞增殖的抑制作用 | 第38-39页 |
| 4.4.2 黄芩苷铜作用后HepG-2细胞凋亡的形态学变化 | 第39-41页 |
| 4.4.3 Annexin V-FITC/PI法分析黄芩苷铜对HepG-2细胞凋亡率的影响 | 第41-43页 |
| 4.4.4 黄芩苷对HepG-2细胞周期的影响 | 第43-44页 |
| 4.4.5 黄芩苷对HepG-2细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第44-50页 |
| 4.5 讨论 | 第50-52页 |
| 4.6 小结 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 展望 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 致谢 | 第68-70页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第70页 |
