摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第一章 文献综述 | 第11-23页 |
1.1 荞麦简介 | 第11-15页 |
1.1.1 苦荞的形态特征 | 第11-12页 |
1.1.2 苦荞的营养价值 | 第12-14页 |
1.1.3 苦荞的食用价值 | 第14页 |
1.1.4 苦荞的药用价值 | 第14页 |
1.1.5 苦荞在作物布局中的作用 | 第14页 |
1.1.6 苦荞的其他作用 | 第14-15页 |
1.2 苦荞黄酮 | 第15-18页 |
1.2.1 苦荞类黄酮 | 第15-16页 |
1.2.2 黄酮醇合酶FLS的研究 | 第16-18页 |
1.3 细胞色素P450家族 | 第18-21页 |
1.3.1 细胞色素P450家族 | 第18-19页 |
1.3.2 CYP98A | 第19-21页 |
1.4 立题依据及研究意义 | 第21-23页 |
1.4.1 立题的目的、意义 | 第21页 |
1.4.2 主要研究内容 | 第21-23页 |
第二章 重组表达载体构建与苦荞不同组织中基因表达分析 | 第23-34页 |
2.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
2.1.1 菌种与质粒 | 第23页 |
2.1.2 工具酶和主要试剂 | 第23页 |
2.1.3 主要实验仪器 | 第23页 |
2.1.4 主要溶液配方 | 第23-24页 |
2.2 实验方法 | 第24-28页 |
2.2.1 FtFLS2和FtCYP98A基因的扩增 | 第24-25页 |
2.2.2 重组表达载体的构建 | 第25-28页 |
2.2.3 苦荞FtFLS2和FtCYP98A的相对表达分析 | 第28页 |
2.3 结果与分析 | 第28-32页 |
2.3.1 FtFLS2和FtCYP98A目标片段的扩增 | 第28-29页 |
2.3.2 FtFLS2和FtCYP98A目标片段的测序及生物信息学分析 | 第29-32页 |
2.3.3 苦荞FtFLS2和FtCYP98A的相对表达分析 | 第32页 |
2.4 讨论 | 第32-34页 |
2.4.1 苦荞FtFLS2和FtCYP98A基因的克隆与重组表达载体的构建 | 第32-33页 |
2.4.2 苦荞FtFLS2和FtCYP98A在不同组织中的表达分析 | 第33-34页 |
第三章 FtFLS2和FtCYP98A的重组表达及分离纯化 | 第34-42页 |
3.1 材料与试剂 | 第34-35页 |
3.1.1 菌种与质粒 | 第34页 |
3.1.2 主要试剂 | 第34页 |
3.1.3 主要仪器 | 第34页 |
3.1.4 主要溶液配方 | 第34-35页 |
3.2 实验方法及步骤 | 第35-38页 |
3.2.1 FtFLS2和FtCYP98A蛋白的诱导表达及可溶性分析 | 第35页 |
3.2.2 SDS-PAGE电泳 | 第35-36页 |
3.2.3 重组蛋白FtFLS2的分离纯化 | 第36-37页 |
3.2.4 重组蛋白FtCYP98A的分离纯化 | 第37页 |
3.2.5 重组蛋白FtFLS2的活性测定 | 第37-38页 |
3.3 结果与分析 | 第38-41页 |
3.3.1 重组FtFLS2和FtCYP98A的诱导表达与可溶性分析 | 第38-39页 |
3.3.2 重组蛋白的分离纯化 | 第39-40页 |
3.3.3 FtFLS2重组蛋白活性测定 | 第40-41页 |
3.4 讨论 | 第41-42页 |
第四章 多克隆抗体的制备及Western blotting分析 | 第42-46页 |
4.1 材料与试剂 | 第42页 |
4.1.1 主要试剂 | 第42页 |
4.1.2 实验仪器 | 第42页 |
4.1.3 主要溶液配方 | 第42页 |
4.2 实验方法 | 第42-44页 |
4.2.1 多克隆抗体制备 | 第42-43页 |
4.2.2 Western blotting分析 | 第43-44页 |
4.3 结果与分析 | 第44页 |
4.3.1 多克隆抗体的Western blotting检测 | 第44页 |
4.4 讨论 | 第44-46页 |
第五章 结论与展望 | 第46-48页 |
5.1 结论 | 第46页 |
5.2 展望 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-55页 |
附录 | 第55-60页 |
缩略词表 | 第60-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
作者简介 | 第62页 |