| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 周围神经损伤的修复方法 | 第12-13页 |
| 1.1.1 直接缝合术 | 第12页 |
| 1.1.2 纤维蛋白胶粘合 | 第12页 |
| 1.1.3 神经移植物 | 第12-13页 |
| 1.1.4 神经导管 | 第13页 |
| 1.2 制备神经导管的生物材料 | 第13-18页 |
| 1.2.1 非降解材料 | 第13-14页 |
| 1.2.2 天然材料 | 第14-16页 |
| 1.2.3 可降解的合成材料 | 第16-18页 |
| 1.2.4 复合材料 | 第18页 |
| 1.3 制备神经导管的方法及设计进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 制备导管的方法 | 第18-19页 |
| 1.3.2 导管设计进展 | 第19-21页 |
| 1.4 本课题研究目的、意义与内容 | 第21-22页 |
| 1.4.1 课题研究目的与意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 课题研究内容 | 第22页 |
| 参考文献 | 第22-28页 |
| 第二章 丝纤维增强三维多孔神经导管的制备与性能 | 第28-52页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第29页 |
| 2.2.1 实验试剂及材料 | 第29页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第29页 |
| 2.3 复合丝素蛋白神经导管的制备与性能表征 | 第29-33页 |
| 2.3.1 复合丝素蛋白神经导管的制备 | 第29-31页 |
| 2.3.2 复合丝素蛋白神经导管的结构表征 | 第31-32页 |
| 2.3.3 复合丝素蛋白神经导管的力学性能测试 | 第32页 |
| 2.3.4 红外光谱分析 | 第32页 |
| 2.3.5 体外降解性[34-36] | 第32-33页 |
| 2.3.6 吸水性的测定 | 第33页 |
| 2.3.7 通透性检测 | 第33页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第33-48页 |
| 2.4.1 静电纺丝条件对纳米纤维的影响 | 第33-36页 |
| 2.4.2 丝素纤维网编织成型 | 第36-39页 |
| 2.4.3 复合丝素蛋白神经导管的形貌结构 | 第39-40页 |
| 2.4.4 复合丝素蛋白神经导管力学性能分析 | 第40-43页 |
| 2.4.5 红外光谱分析 | 第43-44页 |
| 2.4.6 复合丝素蛋白神经导管的体外降解 | 第44-48页 |
| 2.4.7 复合丝素蛋白神经导管的通透性 | 第48页 |
| 2.5 本章小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 第三章 静电纺丝素纳米纤维膜与雪旺氏细胞共培养的研究 | 第52-62页 |
| 3.1 引言 | 第52页 |
| 3.2 材料与方法 | 第52-56页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第52页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第52-53页 |
| 3.2.3 试剂配制 | 第53页 |
| 3.2.4 实验主要仪器 | 第53页 |
| 3.2.5 静电纺丝素纳米纤维膜的制备 | 第53页 |
| 3.2.6 静电纺丝素纳米纤维膜生物相容性的初步研究 | 第53-56页 |
| 3.2.6.1 雪旺氏细胞的分离与纯化 | 第53-54页 |
| 3.2.6.2 雪旺氏细胞与静电纺丝素纳米纤维膜共培养 | 第54页 |
| 3.2.6.3 静电纺丝素纳米纤维膜上雪旺氏细胞的形貌观察 | 第54-55页 |
| 3.2.6.4 MTT 检测细胞活力 | 第55页 |
| 3.2.6.5 实时定量PCR | 第55页 |
| 3.2.6.6 酶联免疫吸附法检测 | 第55-56页 |
| 3.2.6.7 静电纺丝素纳米纤维膜与大鼠背根神经节（DRG）共培养 | 第56页 |
| 3.3 结果 | 第56-59页 |
| 3.3.1 静电纺丝素纳米纤维膜 | 第56页 |
| 3.3.2 雪旺氏细胞的纯化 | 第56-57页 |
| 3.3.3 静电纺丝素纳米纤维膜与雪旺氏细胞共培养 | 第57-59页 |
| 3.3.4 静电纺丝素纳米纤维膜与背根神经节共培养 | 第59页 |
| 3.4 讨论 | 第59-60页 |
| 3.5 本章小结 | 第60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 第四章 复合丝素蛋白神经导管的生物安全性评价 | 第62-82页 |
| 4.1 引言 | 第62-63页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第63-70页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第63-64页 |
| 4.2.2 复合丝素蛋白神经导管浸提液的准备 | 第64页 |
| 4.2.3 复合丝素蛋白神经导管的体外细胞培养 | 第64-65页 |
| 4.2.4 溶血实验 | 第65页 |
| 4.2.5 Ames试验 | 第65-66页 |
| 4.2.6 小鼠骨髓嗜多染红细胞（PCE）微核试验 | 第66页 |
| 4.2.7 小鼠精子畸变实验 | 第66-67页 |
| 4.2.8 皮下植入局部反应 | 第67-68页 |
| 4.2.9 皮内反应实验 | 第68-69页 |
| 4.2.10 迟发型超敏反应试验 | 第69页 |
| 4.2.11 急性全身毒性实验 | 第69-70页 |
| 4.3 结果 | 第70-77页 |
| 4.3.1 体外细胞培养 | 第70-71页 |
| 4.3.2 溶血试验 | 第71-72页 |
| 4.3.3 Ames试验 | 第72页 |
| 4.3.4 小鼠骨髓嗜多染红细胞（PCE）微核实验 | 第72-73页 |
| 4.3.5 小鼠精子畸变实验 | 第73-74页 |
| 4.3.6 皮下植入实验 | 第74-76页 |
| 4.3.7 皮内反应实验 | 第76页 |
| 4.3.8 迟发型超敏反应试验 | 第76页 |
| 4.3.9 急性全身毒性实验 | 第76-77页 |
| 4.4 讨论 | 第77-80页 |
| 4.4.1 体外细胞毒性实验 | 第77页 |
| 4.4.2 遗传毒性作用 | 第77-78页 |
| 4.4.3 皮下植入局部反应试验 | 第78-79页 |
| 4.4.4 皮内刺激 | 第79页 |
| 4.4.5 迟发型超敏反应试验 | 第79-80页 |
| 4.4.6 急性全身毒性实验 | 第80页 |
| 4.5 本章小结 | 第80页 |
| 参考文献 | 第80-82页 |
| 第五章 复合丝素蛋白神经导管修复大鼠坐骨神经缺损的研究 | 第82-100页 |
| 5.1 引言 | 第82页 |
| 5.2 材料和方法 | 第82-87页 |
| 5.2.1 实验动物与分组 | 第82页 |
| 5.2.2 实验材料 | 第82-83页 |
| 5.2.3 实验抗体及试剂 | 第83页 |
| 5.2.4 试剂配制 | 第83页 |
| 5.2.5 实验仪器 | 第83页 |
| 5.2.6 动物损伤模型制备 | 第83-84页 |
| 5.2.7 Catwalk步态分析 | 第84-85页 |
| 5.2.8 足底热痛域检测 | 第85页 |
| 5.2.9 电生理学检测 | 第85页 |
| 5.2.10 组织学与形态计量分析 | 第85-87页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第87-98页 |
| 5.3.1 一般观察 | 第87-88页 |
| 5.3.2 步态分析 | 第88-90页 |
| 5.3.3 热痛阈测定 | 第90-91页 |
| 5.3.4 电生理 | 第91-92页 |
| 5.3.5 腓肠肌形态观察及计量 | 第92-95页 |
| 5.3.6 再生神经形态学分析 | 第95-98页 |
| 5.4 本章小结 | 第98页 |
| 参考文献 | 第98-100页 |
| 第六章 总结与展望 | 第100-102页 |
| 6.1 本文主要工作和结论 | 第100页 |
| 6.2 创新点 | 第100页 |
| 6.3 不足与展望 | 第100-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 附录: 作者在攻读博士学位期间的成果 | 第103页 |
