| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-17页 |
| ·亲环素的发现 | 第9页 |
| ·亲环素的家族成员及结构 | 第9-11页 |
| ·植物亲环素的生化性质 | 第11-12页 |
| ·肽脯氨酰顺反异构酶(PPlase)活性 | 第11-12页 |
| ·能够与环孢霉素A(CsA)特异性结合 | 第12页 |
| ·核酸酶活性 | 第12页 |
| ·是一种花粉过敏原 | 第12页 |
| ·亲环素的生物学功能 | 第12-13页 |
| ·植物亲环素的生物学功能 | 第13-15页 |
| ·参与叶绿体的光保护和氧化还原调节 | 第13页 |
| ·参与植物生长发育 | 第13-14页 |
| ·参与植物逆境响应 | 第14-15页 |
| ·植物亲环素基因表达调控 | 第15-17页 |
| ·亲环素基因在植物中的时空表达 | 第15-16页 |
| ·影响亲环素基因表达的因素 | 第16-17页 |
| 第二章 引言 | 第17-19页 |
| 第三章 蜡梅亲环素基因的克隆和分子特征分析 | 第19-35页 |
| ·实验材料与试剂 | 第19-20页 |
| ·蜡梅花cDNA文库 | 第19页 |
| ·菌株与载体 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19页 |
| ·主要设备 | 第19-20页 |
| ·自配的主要试剂 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-25页 |
| ·EST序列特征分析以及蜡梅亲环素cDNA的获得 | 第20-21页 |
| ·CpCYP基因cDNA序列真实性鉴定及生物信息学分析 | 第21-25页 |
| ·结果与分析 | 第25-33页 |
| ·CpCYP的cDNA的全长的获得 | 第25-26页 |
| ·CpCYP的cDNA的序列特征 | 第26页 |
| ·CpCYP的Blast分析和的蛋白同源性分析 | 第26-29页 |
| ·蜡梅亲环素的二级结构分析 | 第29-30页 |
| ·蜡梅亲环素的信号肽分析 | 第30页 |
| ·蜡梅亲环素的疏水性区域分析 | 第30-31页 |
| ·蜡梅亲环素的卷曲螺旋分析 | 第31页 |
| ·蜡梅亲环素的跨膜结构分析 | 第31-32页 |
| ·蜡梅亲环素的磷酸化位点分析 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| 第四章 蜡梅亲环素基因的原核表达分析 | 第35-47页 |
| ·试验材料与试剂 | 第35-38页 |
| ·试验材料 | 第35-36页 |
| ·试验主要试剂 | 第36页 |
| ·主要设备 | 第36页 |
| ·主要的自配试剂 | 第36-38页 |
| ·试验方法 | 第38-41页 |
| ·蜡梅CpCYP基因表达载体的构建 | 第38-40页 |
| ·CpCYP融合蛋白的表达 | 第40页 |
| ·SDS-PAGE检测表达产物 | 第40-41页 |
| ·表达体系优化 | 第41页 |
| ·结果与分析 | 第41-45页 |
| ·蜡梅CpCYP基因原核表达载体的构建 | 第41-42页 |
| ·pET32a/CpCYP融合蛋白的表达 | 第42-43页 |
| ·表达体系优化 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-47页 |
| 第五章 植物表达载体的构建以及转化烟草的研究 | 第47-59页 |
| ·实验材料 | 第47-49页 |
| ·植物材料 | 第47页 |
| ·菌株与载体 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47页 |
| ·自配的主要试剂 | 第47-48页 |
| ·基本培养基配方 | 第48-49页 |
| ·实验方法 | 第49-54页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA2301-CpCYP的构建 | 第49-51页 |
| ·目的基因导入烟草及转化植株的获得 | 第51-52页 |
| ·转基因烟草的移栽 | 第52页 |
| ·转基因烟草的检测 | 第52-54页 |
| ·结果与分析 | 第54-57页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第54页 |
| ·蜡梅CpCYP基因转烟草以及转化植株的获得 | 第54-57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| 第六章 总结 | 第59-61页 |
| ·结论 | 第59页 |
| ·下一步研究 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 缩略词表 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 发表论文和参加的研究课题 | 第71页 |