| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语 | 第9-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-28页 |
| 1 引言 | 第16-26页 |
| 1.1 获得性免疫综合征（Acquired immune deficiency syndrome，AIDS） | 第16-17页 |
| 1.1.1 Human Immunodeficiency Virus | 第16页 |
| 1.1.2 HIV-gp120 | 第16-17页 |
| 1.2 神经胶质细胞 | 第17-19页 |
| 1.2.1 小胶质细胞 | 第17-18页 |
| 1.2.2 小胶质细胞的活化 | 第18页 |
| 1.2.3 小胶质细胞与吞噬作用 | 第18-19页 |
| 1.3 脑源性神经营养因子（BDNF） | 第19-21页 |
| 1.3.1 BDNF和应激反应 | 第21页 |
| 1.3.2 BDNF和炎症 | 第21页 |
| 1.4 Wnt信号通路 | 第21-26页 |
| 1.4.1 信号通路简介 | 第21-22页 |
| 1.4.2 发展历程 | 第22页 |
| 1.4.3 分类及作用机制 | 第22-24页 |
| 1.4.4 信号通路与疾病 | 第24-26页 |
| 2 实验设计 | 第26-28页 |
| 2.1 实验的目的和意义 | 第26页 |
| 2.2 实验内容 | 第26-27页 |
| 2.3 实验设计流程图 | 第27-28页 |
| 第二章 HIV-gp120对神经胶质细胞BV2的毒性分析 | 第28-32页 |
| 1 实验材料及试剂 | 第28页 |
| 1.1 细胞 | 第28页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第28页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第28页 |
| 2 实验方法 | 第28-30页 |
| 2.1 细胞培养 | 第28-29页 |
| 2.2 细胞冻存 | 第29页 |
| 2.3 MTT | 第29-30页 |
| 2.4 数据分析 | 第30页 |
| 3 实验结果 | 第30-31页 |
| 4 分析与讨论 | 第31-32页 |
| 第三章 HIV-gp120对小胶质细胞中BDNF表达的影响 | 第32-41页 |
| 1 实验材料及试剂 | 第32-35页 |
| 1.1 细胞 | 第32页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第32页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第32-35页 |
| 2 实验方法 | 第35-39页 |
| 2.1 细胞复苏 | 第35-36页 |
| 2.2 细胞培养 | 第36页 |
| 2.3 Western blotting | 第36-38页 |
| 2.3.1 样品的制备 | 第36页 |
| 2.3.2 蛋白质定量（BCA蛋白定量试剂盒） | 第36-37页 |
| 2.3.3 电泳（SDS－PAGE） | 第37页 |
| 2.3.4 转膜 | 第37页 |
| 2.3.5 免疫反应 | 第37-38页 |
| 2.4 Western blotting分析gp120对小胶质细胞中m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第38页 |
| 2.5 数据分析 | 第38-39页 |
| 3 实验结果 | 第39-40页 |
| 4 分析与讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 HIV-gp120对小胶质细胞活化的影响 | 第41-46页 |
| 1 实验材料及试剂 | 第41页 |
| 1.1 细胞 | 第41页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第41页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-43页 |
| 2.1 细胞培养 | 第41页 |
| 2.2 Western blotting | 第41-42页 |
| 2.3 Western blotting分析HIV-gp120对神经小胶质细胞中CD11b表达的影响 | 第42页 |
| 2.4 显微镜观察分析HIV-gp120对神经小胶质细胞形态变化的影响 | 第42页 |
| 2.5 数据分析 | 第42-43页 |
| 3 实验结果 | 第43-44页 |
| 3.1 HIV-gp120上调了神经小胶质细胞的CD11b的表达 | 第43页 |
| 3.2 HIV-gp120激活神经小胶质细胞 | 第43-44页 |
| 4 分析与讨论 | 第44-46页 |
| 第五章 HIV-gp120对神经胶质细胞BV2中Wnt3a、Wnt5a和 β-catenin表达的影响 | 第46-51页 |
| 1 实验材料及试剂 | 第46-47页 |
| 1.1 细胞 | 第46页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第46页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第46-47页 |
| 2 实验方法 | 第47-48页 |
| 2.1 细胞培养 | 第47页 |
| 2.2 Western blotting | 第47页 |
| 2.3 Western blotting分析HIV-gp120对小胶质细胞中 β-catenin、Wnt3a和Wnt5a表达的影响322.4 数据分析 | 第47页 |
| 2.4 数据分析 | 第47-48页 |
| 3 实验结果 | 第48-50页 |
| 3.1 HIV-gp120上调了小胶质细胞中 β-catenin表达 | 第48页 |
| 3.2 HIV-gp120上调了小胶质细胞中Wnt3a的表达 | 第48-49页 |
| 3.3 HIV-gp120不影响小胶质细胞中Wnt5a的表达 | 第49-50页 |
| 4 分析与讨论 | 第50-51页 |
| 第六章 抑制Wnt/β-catenin经典信号通路对BDNF表达的影响 | 第51-60页 |
| 1 实验材料及试剂 | 第51页 |
| 1.1 细胞 | 第51页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第51页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第51页 |
| 2 实验方法 | 第51-53页 |
| 2.1 细胞培养 | 第51页 |
| 2.2 Western blotting | 第51-52页 |
| 2.3 Western blotting分析DKK1对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第52页 |
| 2.4 Western blotting分析DKK1与gp120合用对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第52页 |
| 2.5 Western blotting分析IWR-1 对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第52页 |
| 2.6 Western blotting分析IWR-1 与gp120合用对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第52页 |
| 2.7 数据分析 | 第52-53页 |
| 3 实验结果 | 第53-58页 |
| 3.1 不同浓度的DKK1抑制Wnt/β-catenin信号通路后，对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第53-54页 |
| 3.2 DKK1（100 ng/m L）抑制Wnt/β-catenin信号通路后，HIV-gp120对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第54-55页 |
| 3.3 不同浓度的IWR-1 抑制Wnt/β-catenin信号通路后，对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第55-57页 |
| 3.4 IWR-1（10 μM）抑制Wnt/β-catenin信号通路后，HIV-gp120对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第57-58页 |
| 4 分析与讨论 | 第58-60页 |
| 第七章 激活Wnt/β-catenin经典信号通路对BDNF表达的影响 | 第60-65页 |
| 1 实验材料及试剂 | 第60页 |
| 1.1 细胞 | 第60页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第60页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第60页 |
| 2 实验方法 | 第60-61页 |
| 2.1 细胞培养 | 第60页 |
| 2.2 Western blotting | 第60页 |
| 2.3 Western blotting分析Wnt3a对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第60-61页 |
| 2.4 Western blotting分析DKK1与Wnt3a合用对小胶质细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第61页 |
| 2.5 数据分析 | 第61页 |
| 3 实验结果 | 第61-64页 |
| 3.1 Wnt3a对BV2细胞中 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第61-62页 |
| 3.2 Wnt3a和DKK1同时作用于神经胶质细胞后对 β-catenin及m BDNF/pro BDNF表达的影响 | 第62-64页 |
| 4 分析与讨论 | 第64-65页 |
| 总结 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-77页 |
| 硕士期间发表论文 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
