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游离脂肪酸在脂肪组织胰岛素抵抗中的作用研究及Solexa技术在miRNAs检测中的应用研究

摘要第7-9页
Abstract第9-10页
第一章 研究背景综述第11-55页
    第一节 脂肪组织胰岛素抵抗作用机制的研究进展第12-33页
        一. 胰岛素抵抗第12-16页
            1. 胰岛素简介第12-15页
                1.1 胰岛素的结构及功能第12-13页
                1.2 胰岛素的作用机制第13-15页
            2. 胰岛素抵抗第15-16页
                2.1 胰岛素抵抗的定义第15页
                2.2 胰岛素抵抗发生原因第15-16页
        二. 肥胖与脂肪组织第16-23页
            1. 肥胖第16-17页
            2. 脂肪组织第17-23页
                2.1 脂联素第18-19页
                2.2 瘦素第19页
                2.3 抵抗素第19-20页
                2.4 肿瘤坏死因子第20页
                2.5 内脏脂肪因子第20页
                2.6 白介素-6第20-21页
                2.7 单核蛋白趋化因子第21页
                2.8 补体D第21页
                2.9 纤溶酶原激活物抑制物-1第21页
                2.10 血管紧张素Ⅱ第21-22页
                2.11 自由脂肪酸第22-23页
        三. 脂肪细胞、肥胖与胰岛素抵抗第23-26页
        参考文献第26-33页
    第二节 植物miRNAs在动物中的检测分析及生物学功能研究第33-55页
        一. Solexa测序技术的原理及其应用第33-37页
            1. Solexa测序技术的创立第33页
            2. Solexa测序技术的基本原理第33-35页
            3. Solexa技术的特点第35页
            4. Solexa技术的应用第35-37页
        二. miRNA研究进展概述第37-50页
            1. miRNA的定义及发现历程第37-39页
                1.1 miRNA的定义第37-38页
                1.2 miRNA的发现历程第38-39页
            2. miRNA的成熟过程第39-41页
            3. miRNA的发现方法、鉴定与检测第41-44页
                3.1 miRNA的发现方法第41-42页
                3.2 miRNA的界定第42页
                3.3 miRNA的检测第42-44页
            4. miRNA的作用机制第44-47页
                4.1 miRNA的作用机制第44页
                4.2 miRNA指导靶mRNA的切割第44-45页
                4.3 miRNA指导翻译抑制第45页
                4.4 靶分子的识别第45-47页
            5. 植物miRNA与动物miRNA的异同第47-49页
                5.1 植物中普遍存在miRNA第47页
                5.2 植物miRNA的基本性质第47-48页
                5.3 植物miRNA与动物miRNA的不同第48-49页
            6. miRNA的生物学意义及前景展望第49-50页
                6.1 miRNA的生物学意义第49-50页
                6.2 前景及展望第50页
        参考文献第50-55页
第二章 实验部分第55-113页
    第一节 FFA在脂肪组织胰岛素抵抗中的作用研究第56-78页
        一. 引言第56-57页
        二. 材料和方法第57-65页
            1. 实验材料第57-58页
                1.1 细胞株第57页
                1.2 主要试剂第57-58页
                1.3 主要仪器第58页
            2. 实验方法第58-65页
                2.1 细胞培养第58-59页
                2.2 基因组芯片实验第59-61页
                2.3 RNA分离和实时定量RT-PCR方法分析基因表达水平第61-63页
                2.4 FFA刺激实验第63页
                2.5 Elisa Kit检测蛋白水平第63-64页
                2.6 Western blotting检测蛋白表达水平第64页
                2.7 数值的统计学分析第64-65页
        三. 实验结果第65-73页
            1. 巨噬细胞促进脂肪细胞的胰岛素抵抗作用第65-67页
            2. FFA降低脂肪细胞的胰岛素敏感性,增加巨噬细胞TNF-α的分泌第67-71页
            3. 自由脂肪酸刺激巨噬细胞分泌TNF-α,进而降低脂肪细胞对胰岛素的敏感性第71-73页
        四. 讨论第73-74页
        参考文献第74-78页
    第二节 植物miRNAs在动物中的检测分析及生物学功能研究第78-113页
        一. 引言第78-79页
        二. 材料和方法第79-95页
            1. 实验材料第79-82页
                1.1 Solexa测序主要试剂第79-80页
                1.2 配置试剂第80-81页
                1.3 其他试剂第81页
                1.4 仪器设备第81-82页
            2. 实验方法第82-95页
                2.1 Solexa测序第82-93页
                2.2 miRNA的qRT-PCR定量检测第93-94页
                2.3 Northern blotting检测血清中植物miRNAs第94-95页
                2.4 数值的统计学分析第95页
        三.实验结果第95-111页
            1. 人/动物血清中存在动物miRNAs和植物miRNAs第95-102页
                1.1 人/动物血清中存在内源性动物miRNAs第95-98页
                1.2 人/动物血清中存在外源性植物miRNAs第98-102页
            2. 小鼠各组织中存在动物miRNAs和植物miRNAs第102-111页
                2.1 小鼠各组织中存在特异高富含动物miRNAs第102-110页
                2.2 小鼠组织中存在植物miRNAs第110-111页
        四. 讨论第111-112页
        参考文献第112-113页
Publications第113-115页
致谢第115-116页

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