| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 主要英文缩略词简表 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-27页 |
| 实验材料与方法 | 第27-41页 |
| 1. 实验材料 | 第27-30页 |
| 1.1 实验动物 | 第27页 |
| 1.2 主要试剂及耗材 | 第27-28页 |
| 1.3 主要仪器及型号 | 第28-29页 |
| 1.4 引物 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-41页 |
| 2.1 主要溶液配制 | 第30-32页 |
| 2.2 CD169-DTR小鼠基因型鉴定 | 第32-34页 |
| 2.3 急性小鼠结肠炎模型的建立 | 第34页 |
| 2.4 实时荧光定量PCR检测基因的表达 | 第34-36页 |
| 2.5 组织病理学检测 | 第36-37页 |
| 2.6 流式细胞术 | 第37-38页 |
| 2.7 免疫荧光 | 第38-39页 |
| 2.8 酶联免疫吸附实验( ELISA) | 第39页 |
| 2.9 上清转移实验 | 第39-41页 |
| 实验结果 | 第41-46页 |
| 1 小鼠结肠炎模型的建立 | 第41页 |
| 2 mLNs在小鼠结肠炎模型中的作用 | 第41-42页 |
| 3 小鼠结肠炎模型mLNs中CD169~+巨噬细胞的变化 | 第42页 |
| 4 结肠炎模型不能在CD169~+巨噬细胞删除的小鼠体内被成功诱导 | 第42-43页 |
| 5 CD169~+巨噬细胞的存在与否可以影响Th17细胞相关的细胞因子的表达和Th17细胞的增殖 | 第43-44页 |
| 6 体外实验中WT结肠炎小鼠mLNs细胞和结肠组织培养上清可以促进CD169-DTR小鼠mLNs和结肠中炎性细胞因子的表达 | 第44-45页 |
| 7 CD169~+巨噬细胞可以主导性的分泌炎性细胞因子 | 第45-46页 |
| 讨论 | 第46-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 论文实验结果附图 | 第51-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文和参与课题 | 第69-70页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第70页 |
