| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 文献综述 | 第10-16页 |
| 第一章 猪流行性腹泻病毒研究进展 | 第10-16页 |
| 1.1 PED的流行情况 | 第10页 |
| 1.2 猪流行性腹泻病毒 | 第10-12页 |
| 1.2.1 PEDV形态特征 | 第10-11页 |
| 1.2.2 PEDV的基因组结构及主要结构蛋白功能 | 第11页 |
| 1.2.3 PEDV的培养特性 | 第11-12页 |
| 1.2.4 PEDV的理化特性 | 第12页 |
| 1.3 PED的临床症状及病理变化 | 第12页 |
| 1.4 PED的诊断方法 | 第12-14页 |
| 1.4.1 病原学诊断 | 第12-13页 |
| 1.4.2 血清学诊断 | 第13页 |
| 1.4.3 分子生物学诊断 | 第13-14页 |
| 1.5 PED的疫苗研究进展 | 第14-15页 |
| 1.5.1 灭活疫苗 | 第14页 |
| 1.5.2 弱毒疫苗 | 第14页 |
| 1.5.3 核酸疫苗 | 第14-15页 |
| 1.5.4 乳酸菌载体疫苗 | 第15页 |
| 1.5.5 转基因植物疫苗 | 第15页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第15-16页 |
| 试验研究 | 第16-34页 |
| 第二章 猪流行性腹泻病毒的分离与鉴定 | 第16-24页 |
| 2.1 材料 | 第16页 |
| 2.1.1 病料来源和细胞株 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第16页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第16页 |
| 2.2 方法 | 第16-19页 |
| 2.2.1 病料的处理 | 第16-17页 |
| 2.2.2 引物的设计与合成 | 第17页 |
| 2.2.3 病毒基因组RNA的提取及RT-PCR | 第17-18页 |
| 2.2.4 细胞的复苏 | 第18页 |
| 2.2.5 病毒的分离培养 | 第18页 |
| 2.2.6 不同代次细胞上清病毒的PCR检测 | 第18页 |
| 2.2.7 病毒细胞半数感染量（TCID50）的测定 | 第18-19页 |
| 2.2.8 间接免疫荧光检测（IFA） | 第19页 |
| 2.3 结果 | 第19-22页 |
| 2.3.1 病料的RT-PCR检测结果 | 第19页 |
| 2.3.2 不同代次细胞上清病毒的检测 | 第19-20页 |
| 2.3.3 分离病毒培养结果 | 第20页 |
| 2.3.4 病毒TCID50的测定 | 第20-21页 |
| 2.3.5 间接免疫荧光检测（IFA）结果 | 第21-22页 |
| 2.4 讨论 | 第22页 |
| 2.5 小结 | 第22-24页 |
| 第三章 猪流行性腹泻病毒SX-YL株S基因的遗传变异分析 | 第24-34页 |
| 3.1 材料 | 第24页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第24页 |
| 3.2 方法 | 第24-27页 |
| 3.2.1 引物的设计与合成 | 第24-25页 |
| 3.2.2 PEDV SX-YL株的培养 | 第25页 |
| 3.2.3 PEDV SX-YL株S基因的扩增 | 第25页 |
| 3.2.4 PEDV SX-YL株S基因的克隆 | 第25-26页 |
| 3.2.5 PEDV SX-YL株S基因的核苷酸序列测定 | 第26-27页 |
| 3.3 结果 | 第27-32页 |
| 3.3.1 PEDV SX-YL株S基因的PCR扩增结果 | 第27页 |
| 3.3.2 PEDV SX-YL株S基因的重组质粒鉴定结果 | 第27-28页 |
| 3.3.3 PEDV SX-YL株S基因的测序结果 | 第28-30页 |
| 3.3.4 PEDV SX-YL株S基因的同源性分析 | 第30-31页 |
| 3.3.5 PEDV SX-YL株S基因的遗传变异分析 | 第31-32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-33页 |
| 3.5 小结 | 第33-34页 |
| 结论 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 附录 | 第40-42页 |
| 致谢 | 第42-44页 |
| 作者简介 | 第44页 |
