| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 英汉缩略词 | 第14-15页 |
| 第一部分 检测柯萨奇病毒A10的RT-PCR方法研究 | 第15-49页 |
| 1. 引言 | 第15-23页 |
| 1.1 柯萨奇病毒病原体特征 | 第16-17页 |
| 1.2 感染柯萨奇病毒A组临床特征 | 第17-19页 |
| 1.3 柯萨奇病毒流行病学情况 | 第19-23页 |
| 2. 一种快速检测柯萨奇A10病毒的实时RT-PCR方法 | 第23-38页 |
| 2.1 材料和方法 | 第23-28页 |
| 2.1.1 病毒株与标本 | 第23页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 引物与探针的设计与合成 | 第25页 |
| 2.1.5 病毒接种及收获 | 第25-26页 |
| 2.1.6 核酸的提取 | 第26页 |
| 2.1.7 CVA10 VP1基因重组质粒的构建 | 第26-27页 |
| 2.1.8 方法特异性和灵敏性检测 | 第27-28页 |
| 2.1.9 准确率的检测 | 第28页 |
| 2.2 研究结果 | 第28-35页 |
| 2.2.1 VP1基因序列分析 | 第28-31页 |
| 2.2.2 TaqMan实时荧光定量RT-PCR的对CVA10病毒检测的特异性与灵敏性研究 | 第31-34页 |
| 2.2.3 阳性临床样本检测研究方法准确性 | 第34-35页 |
| 2.3. 讨论 | 第35-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 3.“三步法”扩增柯萨基病毒A10全基因组的研究 | 第38-49页 |
| 3.1 材料和方法 | 第38-43页 |
| 3.1.1 病毒株来源 | 第38页 |
| 3.1.2 主要仪器设备 | 第38-39页 |
| 3.1.3 主要试剂材料 | 第39页 |
| 3.1.4 病毒接种及收获 | 第39页 |
| 3.1.5 RNA的提取 | 第39-41页 |
| 3.1.6 引物的制备 | 第41-42页 |
| 3.1.7“三步法”RT-PCR和六步PCR反应 | 第42-43页 |
| 3.2 实验结果 | 第43-47页 |
| 3.2.1“三步法”RT-PCR对CVA10病毒全基因组扩增的结果 | 第43-45页 |
| 3.2.2“六步法”PCR对CVA10病毒全基因组扩增的结果 | 第45-47页 |
| 3.3 讨论 | 第47-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 第二部分 白叶藤碱类似物的合成、抗菌、抗病毒活性评价 | 第49-95页 |
| 1. 引言 | 第49-58页 |
| 1.1 白叶藤碱类生物碱的分离及其生物活性 | 第49-52页 |
| 1.2 白叶藤碱类生物碱的合成进展 | 第52-54页 |
| 1.3 白叶藤碱衍生物的生物学活性 | 第54-57页 |
| 1.4 本部分工作的研究内容 | 第57-58页 |
| 2. 材料与方法 | 第58-86页 |
| 2.1 化合物的合成 | 第58-82页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第58页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第58-59页 |
| 2.1.3 7、8 或 9，11-位双取代苯并[B]呋喃并喹啉类化合物的合成 | 第59页 |
| 2.1.4 合成过程 | 第59-82页 |
| 2.2 化合物抗菌活性研究 | 第82-85页 |
| 2.2.1 仪器和试剂 | 第82-83页 |
| 2.2.2 药品制备 | 第83页 |
| 2.2.3 菌种 | 第83页 |
| 2.2.4 纸片琼脂扩散法 | 第83-84页 |
| 2.2.5 琼脂稀释法测定抗菌药物最低抑菌浓度(MIC) | 第84页 |
| 2.2.6 数据分析 | 第84-85页 |
| 2.3 化合物病毒活性研究 | 第85-86页 |
| 3. 结果与讨论 | 第86-95页 |
| 3.1 合成部分 | 第86-89页 |
| 3.2 白叶藤碱衍生物抗菌活性评价 | 第89-95页 |
| 结论 | 第95-97页 |
| 参考文献 | 第97-105页 |
| 附录 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 综述 柯萨奇病毒A10感染研究现状 | 第107-116页 |
| 参考文献 | 第114-116页 |
