| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-19页 |
| ·肿瘤的侵袭与转移 | 第14-15页 |
| ·ATP5B的研究进展 | 第15-18页 |
| ·ATP5B亚基的异位表达 | 第15-16页 |
| ·异位ATP5B与肿瘤 | 第16-17页 |
| ·异位ATP5B与血管新生 | 第17-18页 |
| ·本研究拟解决的问题及项目创新点 | 第18-19页 |
| 第2章 材料和方法 | 第19-30页 |
| ·实验材料 | 第19-22页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| ·主要仪器 | 第20-21页 |
| ·主要溶液 | 第21-22页 |
| ·细胞培养条件及来源 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-30页 |
| ·免疫荧光组织化学双重染色 | 第22-23页 |
| ·细胞免疫荧光染色 | 第23-24页 |
| ·Western blot | 第24-26页 |
| ·细胞免疫电镜染色 | 第26页 |
| ·流式细胞术 | 第26-27页 |
| ·逆转录实时定量PCR | 第27-28页 |
| ·Transwell侵袭实验 | 第28页 |
| ·HUVEC成管实验 | 第28-29页 |
| ·数据处理 | 第29-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-41页 |
| ·ATP5B在高级别前列腺癌组织中的表达及定位 | 第30-31页 |
| ·ATP5B在前列腺癌高转移细胞系PC-3M细胞及前列腺癌低转移细胞系PC-3 中的表达及亚细胞定位 | 第31-34页 |
| ·细胞免疫荧光双染检测ATP5B在PC-3M和PC-3 两种细胞中的表达 | 第31-32页 |
| ·免疫电镜技术对ATP5B在PC-3M和PC-3 两种细胞中表达的亚细胞定位 | 第32页 |
| ·Western blot对ATP5B在PC-3M和PC-3 细胞膜中表达的半定量检测 | 第32-34页 |
| ·流式细胞术对ATP5B在PC-3M和PC-3 细胞膜中表达量的检测 | 第34页 |
| ·短肽B04与PC-3M细胞膜上的ATP5B特异性结合 | 第34-38页 |
| ·短肽B04与PC-3M细胞膜上的蛋白结合 | 第34-35页 |
| ·与短肽B04孵育后，PC-3M细胞膜上ATP5B的阳性率明显下降 | 第35-37页 |
| ·B04与ATP5B特异性结合 | 第37页 |
| ·与短肽B04孵育后，PC-3M细胞中ATP5B的m RNA升高 | 第37-38页 |
| ·B04通过封闭PC-3M细胞膜上表达的ATP5B降低PC-3M细胞的侵袭能力 | 第38-39页 |
| ·短肽B04对HUVEC成管能力的影响 | 第39-41页 |
| 第4章 讨论 | 第41-45页 |
| ·噬菌体展示肽库在识别肿瘤转移相关蛋白中的适用性 | 第41-42页 |
| ·ATP5B的异位表达 | 第42页 |
| ·异位表达的ATP5B的功能 | 第42-43页 |
| ·异位ATP5B调节细胞生物学行为可能的信号通路 | 第43-45页 |
| 第5章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 作者简介 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
