高效异槲皮素产生菌的选育及转化条件优化
摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
第1章 绪论 | 第11-21页 |
·微生物转化的研究概况 | 第11-15页 |
·生物转化 | 第11页 |
·微生物转化的特点 | 第11页 |
·微生物转化在天然活性成分研究方面的应用 | 第11-13页 |
·微生物转化的主要方法 | 第13-15页 |
·影响微生物转化的因素 | 第15页 |
·芦丁的概述 | 第15-16页 |
·芦丁的来源及理化性质 | 第15-16页 |
·芦丁的生理活性及药用价值 | 第16页 |
·异槲皮素概述 | 第16-19页 |
·异槲皮素简介 | 第16页 |
·异槲皮素的提取分离和含量测定 | 第16-17页 |
·异槲皮素的药理作用 | 第17-18页 |
·异槲皮素衍生物的结构修饰 | 第18-19页 |
·产异槲皮素菌株的选育 | 第19-20页 |
·从自然环境中筛选 | 第19页 |
·人工诱变选育 | 第19-20页 |
·本课题的研究目的和意义 | 第20页 |
·本文研究主要内容 | 第20-21页 |
第2章 α-L-鼠李糖苷酶产生菌C44诱变育种 | 第21-37页 |
·实验材料 | 第21-23页 |
·菌种来源 | 第21页 |
·主要培养基 | 第21页 |
·主要试剂 | 第21-22页 |
·实验仪器 | 第22-23页 |
·实验方法 | 第23-27页 |
·菌种活化 | 第23页 |
·芦丁溶解性能以及稳定性测定 | 第23-24页 |
·定量薄层层析异槲皮素标准曲线 | 第24页 |
·菌株C44基础条件的测定 | 第24-25页 |
·紫外诱变 | 第25-26页 |
·常压室温等离子体诱变 | 第26-27页 |
·实验结果与分析 | 第27-35页 |
·芦丁溶解性能以及稳定性测定 | 第27-29页 |
·菌株C44生长的测定 | 第29-32页 |
·定量薄层层析法标准曲线 | 第32-33页 |
·紫外诱变的致死率曲线 | 第33页 |
·α-L-鼠李糖苷酶高产菌株的筛选 | 第33-34页 |
·菌株遗传稳定性研究 | 第34页 |
·常压室温等离子体诱变的致死率曲线 | 第34页 |
·α-L-鼠李糖苷酶高产菌株的筛选 | 第34-35页 |
·菌株遗传稳定性研究 | 第35页 |
·小结 | 第35-37页 |
第3章 菌株UV245静息细胞转化体系优化 | 第37-50页 |
·实验材料 | 第37-38页 |
·菌株来源 | 第37页 |
·主要培养基 | 第37页 |
·试剂及缓冲液 | 第37页 |
·实验仪器 | 第37-38页 |
·实验方法 | 第38-40页 |
·碱性缓冲液的选择 | 第38页 |
·静息细胞的制备 | 第38页 |
·单因素试验 | 第38-39页 |
·转化体系的优化 | 第39页 |
·高效液相色谱法检测 | 第39-40页 |
·实验结果与分析 | 第40-49页 |
·碱性缓冲液的选择 | 第40-41页 |
·单因素试验结果分析 | 第41-44页 |
·转化体系的优化 | 第44-47页 |
·高效液相色谱法检测 | 第47-49页 |
·小结 | 第49-50页 |
第4章 异槲皮素的分离纯化 | 第50-55页 |
·实验材料 | 第50页 |
·菌株来源 | 第50页 |
·实验培养基及试剂 | 第50页 |
·实验仪器 | 第50页 |
·实验方法 | 第50-52页 |
·菌体的收集 | 第50页 |
·转化液的制备 | 第50-51页 |
·硅胶柱分离纯化 | 第51页 |
·高效液相色谱法检测纯度 | 第51-52页 |
·实验结果与分析 | 第52-54页 |
·聚酰胺薄层层析结果 | 第52页 |
·蛋白/核酸分析仪扫描结果 | 第52-53页 |
·高效液相色谱法检测纯度结果 | 第53-54页 |
·小结 | 第54-55页 |
第5章 结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
攻读学位期间取得的科研成果 | 第63页 |