摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-9页 |
缩写与简称 | 第9-14页 |
前言 | 第14-24页 |
1、增强 UV-B 辐射对植物的生物学效应 | 第14-17页 |
·增强 UV-B 辐射对植物生长发育的影响 | 第14-15页 |
·增强 UV-B 辐射对植物生理生化的影响 | 第15-17页 |
·增强 UV-B 辐射对光合作用的影响 | 第15页 |
·增强 UV-B 辐射对植物抗氧化系统及细胞膜的影响 | 第15-16页 |
·增强 UV-B 辐射对植物蛋白质及酶活性的影响 | 第16-17页 |
·增强 UV-B 辐射对植物遗传物质及 DNA 损伤的影响 | 第17页 |
2、激光的生物学效应 | 第17-19页 |
·激光的种类及作用机理 | 第17-18页 |
·激光对植物的影响 | 第18-19页 |
·激光对植物生长发育的影响 | 第18页 |
·激光对植物生理生化的影响 | 第18页 |
·激光对植物遗传学效应的影响 | 第18-19页 |
3、微管结合蛋白 MAP65-1 概述 | 第19-22页 |
·微管的基本特征 | 第19页 |
·微管结合蛋白 | 第19-20页 |
·拟南芥微管结合蛋白 MAP65 | 第20-22页 |
4、本研究的内容和意义 | 第22-24页 |
第一章 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对拟南芥幼苗生理指标的影响 | 第24-39页 |
1、材料 | 第24页 |
·实验材料 | 第24页 |
·实验主要试剂 | 第24页 |
·实验主要仪器 | 第24页 |
2、实验方法 | 第24-29页 |
·材料培养 | 第24页 |
·处理设置 | 第24-25页 |
·He-Ne 激光辐照处理设置 | 第24-25页 |
·UV-B 辐射处理设置 | 第25页 |
·生理指标的测定 | 第25-29页 |
·拟南芥幼苗根长的测定 | 第25-26页 |
·丙二醛(MDA)含量的测定 | 第26页 |
·可溶性蛋白含量的测定 | 第26-27页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第27-28页 |
·过氧化物酶活性的测定 | 第28页 |
·过氧化氢酶活性的测定 | 第28-29页 |
·数据统计与分析 | 第29页 |
3、结果与分析 | 第29-37页 |
·He-Ne 激光对拟南芥幼苗生理指标的影响 | 第29-33页 |
·He-Ne 激光对拟南芥幼苗根长的影响 | 第29-30页 |
·He-Ne 激光对拟南芥幼苗 MDA 含量的影响 | 第30页 |
·He-Ne 激光对拟南芥幼苗可溶性蛋白含量的影响 | 第30-31页 |
·He-Ne 激光对拟南芥幼苗抗氧化酶类活性的影响 | 第31-33页 |
·增强 UV-B 辐射对拟南芥幼苗生理指标的影响 | 第33-37页 |
·增强 UV-B 辐射对拟南芥幼苗根长的影响 | 第33页 |
·增强 UV-B 辐射对拟南芥幼苗 MDA 的影响 | 第33-34页 |
·增强 UV-B 辐射对拟南芥幼苗可溶性蛋白的影响 | 第34页 |
·增强 UV-B 辐射对拟南芥幼苗抗氧化酶类的影响 | 第34-37页 |
4、讨论 | 第37-39页 |
第二章 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对拟南芥叶片微管结合蛋白MAP65-1 含量及其分布的影响 | 第39-50页 |
1、材料 | 第39页 |
·实验材料 | 第39页 |
·实验主要试剂及仪器 | 第39页 |
2、实验方法 | 第39-42页 |
·材料的培养 | 第39页 |
·处理设置 | 第39-40页 |
·蛋白的提取 | 第40-41页 |
·微管蛋白及 MAP65-1 蛋白的提取 | 第40-41页 |
·蛋白含量的测定 | 第41页 |
·SDS-PAGE 凝胶电泳和免疫印迹 | 第41页 |
·图像采集及数据分析 | 第41页 |
·间接免疫荧光标记 | 第41-42页 |
·原生质体的制备 | 第41-42页 |
·叶肉细胞原生质体的间接免疫荧光标记 | 第42页 |
·图像的观察与采集 | 第42页 |
3、结果与分析 | 第42-48页 |
·紫外分光图谱分析蛋白含量 | 第42-44页 |
·微管蛋白含量 | 第42-43页 |
·MAP65 蛋白含量 | 第43-44页 |
·SDS-PAGE 聚丙烯酰胺凝胶电泳及 Western Blot 鉴定 | 第44-46页 |
·微管蛋白的 SDS-PAGE 聚丙烯酰胺凝胶电泳及鉴定 | 第44页 |
·MAP65 蛋白的 SDS-PAGE 聚丙烯酰胺凝胶电泳及微管结合蛋白 MAP65-1 的Western Blot 鉴定 | 第44-45页 |
·He-Ne 激光与增强 UV-B 辐射对拟南芥叶片 MAP65-1 相对含量的影响 | 第45-46页 |
·拟南芥原生质体中微管与微管结合蛋白的共定位 | 第46-47页 |
·增强 UV-B 辐射对拟南芥原生质体微管结合蛋白 MAP65-1 分布与定位的影响 | 第47-48页 |
4、讨论 | 第48-50页 |
第三章 He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对拟南芥叶片 MAP65-1 基因表达与调控的影响 | 第50-58页 |
1、材料 | 第50页 |
·实验材料 | 第50页 |
·实验主要试剂 | 第50页 |
·实验主要仪器 | 第50页 |
2、实验方法 | 第50-53页 |
·处理设置 | 第50页 |
·取材 | 第50页 |
·实验方法 | 第50-51页 |
·拟南芥总 RNA 的提取 | 第50-51页 |
·RNA 样品的琼脂糖凝胶电泳检测 | 第51页 |
·RNA 样品的纯度检测 | 第51页 |
·拟南芥 ATMAP65-1 基因的 RT-PCR | 第51-53页 |
·cDNA 第一链的合成 | 第51-52页 |
·内参基因的 RT-PCR(调整模板) | 第52页 |
·ATMAP65-1 基因的 RT-PCR | 第52-53页 |
·数据分析 | 第53页 |
3、结果与分析 | 第53-56页 |
·RNA 纯度及完整性的检测 | 第53-54页 |
·RNA 纯度的检测结果 | 第53页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测拟南芥 Total RNA 的完整性结果 | 第53-54页 |
·ATMAP65-1 基因半定量 RT-PCR 产物结果分析 | 第54-56页 |
4、讨论 | 第56-58页 |
结论 | 第58-60页 |
致谢 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-74页 |
附录:攻读硕士期间发表的文章 | 第74页 |