| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-12页 |
| 附表与附图目录 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-20页 |
| ·鼠尾草属植物抗血管新生与抗肿瘤研究应用 | 第13-16页 |
| ·血管新生机制 | 第13-14页 |
| ·血管新生与肿瘤的关系 | 第14-15页 |
| ·鼠尾草属植物抗血管新生 | 第15页 |
| ·鼠尾草属植物抗肿瘤 | 第15-16页 |
| ·血管新生模型 | 第16-19页 |
| ·体内血管新生模型 | 第16-18页 |
| ·体外血管新生模型 | 第18-19页 |
| ·课题的内容、目的及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 抑制血管新生活性筛选模型的建立 | 第20-26页 |
| ·主要仪器及试剂 | 第20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·CAM模型培养条件的优选 | 第20-23页 |
| ·CAM培养温度的优选 | 第21页 |
| ·CAM培养湿度的优选 | 第21-22页 |
| ·CAM培养消毒方式的优选 | 第22-23页 |
| ·CAM给药方式的优选 | 第23-25页 |
| ·传统给药方式的考察 | 第23-24页 |
| ·新型给药方式的考察 | 第24-25页 |
| ·讨论 | 第25-26页 |
| 第三章 鼠尾草属植物抑制血管新生活性段的筛选 | 第26-31页 |
| ·仪器和试剂材料 | 第26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·试剂 | 第26页 |
| ·材料 | 第26页 |
| ·极性段划分 | 第26-27页 |
| ·极性段的活性筛选 | 第27-28页 |
| ·实验器械准备 | 第27页 |
| ·待测溶液配制 | 第27页 |
| ·给药载体制备 | 第27页 |
| ·鸡胚的孵育 | 第27-28页 |
| ·鸡胚的开窗加药 | 第28页 |
| ·标本制作 | 第28页 |
| ·数据处理 | 第28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-31页 |
| ·结果 | 第28-30页 |
| ·讨论 | 第30-31页 |
| 第四章 单体化合物抑制血管新生活性的筛选 | 第31-43页 |
| ·主要仪器和试剂材料 | 第32-33页 |
| ·主要仪器 | 第32页 |
| ·试剂 | 第32-33页 |
| ·材料 | 第33页 |
| ·利用鸡胚尿囊膜对单体化合物进行活性筛选 | 第33-35页 |
| ·实验器械准备 | 第33页 |
| ·待测溶液配制 | 第33页 |
| ·给药载体制备 | 第33-34页 |
| ·鸡胚的孵育 | 第34页 |
| ·鸡胚的开窗加药 | 第34页 |
| ·标本制作 | 第34页 |
| ·数据处理 | 第34-35页 |
| ·采用人脐内皮细胞(HUVEC)模型对单体化合物进行活性筛选 | 第35-36页 |
| ·HUVEC细胞培养基的配制 | 第35页 |
| ·相关溶液的配制 | 第35页 |
| ·人脐静脉细胞的培养 | 第35页 |
| ·待测化合物溶液配制 | 第35页 |
| ·MTT检测细胞增殖 | 第35-36页 |
| ·人脐内皮细胞迁移实验 | 第36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-43页 |
| ·鸡胚尿囊膜模型筛选结果 | 第36-37页 |
| ·人脐静脉内皮细胞模型筛选结果 | 第37-38页 |
| ·细胞划痕实验结果 | 第38-39页 |
| ·讨论 | 第39-43页 |
| 第五章 单体化合物抗肿瘤活性研究 | 第43-53页 |
| ·主要仪器和试剂材料 | 第44页 |
| ·主要仪器 | 第44页 |
| ·主要试剂 | 第44页 |
| ·主要材料 | 第44页 |
| ·单体化合物对于三种肿瘤细胞增殖能力的影响 | 第44-47页 |
| ·三种肿瘤细胞完全培养基的配制 | 第44页 |
| ·相关溶液的配制 | 第44-45页 |
| ·三种肿瘤细胞的培养 | 第45页 |
| ·待测化合物溶液的配制 | 第45页 |
| ·MTT实验 | 第45页 |
| ·细胞划痕实验 | 第45-46页 |
| ·细胞凋亡检测 | 第46-47页 |
| ·结果与讨论 | 第47-53页 |
| ·MTT实验结果 | 第47-50页 |
| ·细胞划痕实验结果 | 第50-51页 |
| ·荧光染色实验结果 | 第51-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| 第六章 抑制血管新生机制的研究 | 第53-60页 |
| ·主要仪器及试剂材料 | 第53-54页 |
| ·主要仪器 | 第53页 |
| ·主要试剂 | 第53-54页 |
| ·主要材料 | 第54页 |
| ·ELISA检测HUVEC中VEGF的表达量 | 第54-55页 |
| ·HUVEC细胞培养基的配制 | 第54页 |
| ·相关溶液的配制 | 第54页 |
| ·HUVEC细胞的培养 | 第54页 |
| ·待测化合物溶液配制 | 第54-55页 |
| ·ELISA实验 | 第55页 |
| ·ELISA检测HepG2中VEGF的表达量 | 第55-57页 |
| ·HepG2细胞完全培养基的配制 | 第55-56页 |
| ·相关溶液的配制 | 第56页 |
| ·HepG2的培养 | 第56页 |
| ·待测化合物溶液配制 | 第56页 |
| ·ELISA实验 | 第56页 |
| ·免疫组化实验 | 第56-57页 |
| ·结果与讨论 | 第57-60页 |
| ·HUVEC培养基ELISA实验结果 | 第57-58页 |
| ·HepG2细胞培养基ELISA实验结果 | 第58页 |
| ·HepG2细胞中免疫组化实验结果 | 第58-59页 |
| ·讨论 | 第59-60页 |
| 第七章 结语与展望 | 第60-64页 |
| ·结语 | 第60-63页 |
| ·主要实验结果 | 第60-62页 |
| ·论文创新点 | 第62页 |
| ·存在的问题 | 第62-63页 |
| ·展望 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 附录A 攻读硕士期间发表论文目录 | 第71页 |