SOD1模型化合物调控干旱胁迫下水稻细胞的抗氧化活性
摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
本论文主要创新点 | 第8-12页 |
第一章 绪论 | 第12-22页 |
·植物体内的活性氧 | 第12-14页 |
·活性氧产生的场所 | 第12-13页 |
·活性氧的生物学功能 | 第13-14页 |
·活性氧的清除机制 | 第14页 |
·影响植物活性氧及抗氧化物酶活性的因素分析 | 第14-16页 |
·非生物胁迫对植物活性氧代谢的影响 | 第15页 |
·非生物胁迫对植物抗氧化酶活性的影响 | 第15-16页 |
·胁迫条件下提高植物抗氧化物酶活性的途径 | 第16-17页 |
·外源化合物处理与植物抗氧化物酶活性 | 第16-17页 |
·转基因与植物抗氧化物酶活性 | 第17页 |
·活性氧的检测及植物抗氧化物酶活性的测定方法 | 第17-19页 |
·活性氧的检测 | 第17-18页 |
·植物抗氧化物酶活性的测定方法 | 第18-19页 |
·选题意义 | 第19-22页 |
第二章 铜配合物的SOD活性检测 | 第22-26页 |
·引言 | 第22页 |
·主要仪器、试剂和材料 | 第22-23页 |
·实验仪器 | 第22页 |
·实验试剂 | 第22-23页 |
·溶液配制 | 第23页 |
·实验方法 | 第23页 |
·NBT还原法检测SOD活性 | 第23页 |
·结果与讨论 | 第23-25页 |
·各种配合物及牛SOD1的IC_(50)测定 | 第23-25页 |
·小结 | 第25-26页 |
第三章 光谱法和原位组织法检测水稻组织内活性氧 | 第26-37页 |
·引言 | 第26页 |
·主要仪器、试剂和材料 | 第26-28页 |
·实验仪器 | 第26页 |
·实验试剂 | 第26-27页 |
·溶液配制 | 第27-28页 |
·水稻秧苗的培养 | 第28页 |
·实验方法 | 第28-29页 |
·水稻根中O_2~(-·) 的检测 | 第28页 |
·水稻叶中H_2O_2的检测 | 第28页 |
·水稻根中HO·的检测 | 第28页 |
·NBT组织染色法检测O_2~(-·) | 第28-29页 |
·DAB组织染色法检测H_2O_2 | 第29页 |
·H_2DCFDA荧光染色法检测H_2O_2 | 第29页 |
·结果与讨论 | 第29-35页 |
·水稻根中O_2~(-·) 的检测 | 第29-30页 |
·水稻叶中H_2O_2的检测 | 第30-32页 |
·水稻根中HO·的检测 | 第32-33页 |
·NBT组织染色法检测O_2~(-·) | 第33页 |
·DAB组织染色法检测H_2O_2 | 第33-34页 |
·H_2DCFDA荧光染色法检测H_2O_2 | 第34-35页 |
·小结 | 第35-37页 |
第四章 水稻组织内抗氧化酶活性分析 | 第37-52页 |
·引言 | 第37页 |
·实验仪器与材料 | 第37-40页 |
·主要仪器 | 第37-38页 |
·主要试剂和材料 | 第38页 |
·溶液配制 | 第38-40页 |
·水稻秧苗的培养 | 第40页 |
·粗酶液的制备 | 第40页 |
·实验方法 | 第40-43页 |
·水稻组织内SOD活性分析 | 第41页 |
·水稻组织内CAT活性分析 | 第41页 |
·水稻组织内APX活性分析 | 第41页 |
·水稻组织内GR活性分析 | 第41页 |
·SOD的凝胶电泳活性分析 | 第41页 |
·CAT的凝胶电泳活性分析 | 第41-42页 |
·APX的凝胶电泳活性分析 | 第42页 |
·GR的凝胶电泳活性分析 | 第42页 |
·酶联免疫分析 | 第42-43页 |
·结果与讨论 | 第43-50页 |
·水稻叶中SOD的活性分析 | 第43-44页 |
·水稻叶中CAT活性分析 | 第44-45页 |
·水稻叶中APX活性分析 | 第45-46页 |
·水稻叶中GR活性分析 | 第46-47页 |
·SOD的凝胶电泳活性分析 | 第47-48页 |
·CAT的凝胶电泳活性分析 | 第48页 |
·APX的凝胶电泳活性分析 | 第48-49页 |
·GR的凝胶电泳活性分析 | 第49页 |
·SOD和CAT的酶联免疫分析 | 第49-50页 |
·小结 | 第50-52页 |
第五章 全文总结 | 第52-54页 |
·主要研究结果 | 第52页 |
·课题展望 | 第52-54页 |
参考文献 | 第54-59页 |
附录 | 第59-61页 |
致谢 | 第61页 |