特别鸣谢 | 第1-4页 |
目录 | 第4-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-11页 |
前言 | 第11-13页 |
一.实验材料与方法 | 第13-20页 |
(一) 实验材料 | 第13-15页 |
1. 实验动物 | 第13页 |
2. 主要试剂与药品 | 第13-14页 |
3. 试剂配置 | 第14页 |
4. 主要实验设备 | 第14-15页 |
(二) 实验方法 | 第15-18页 |
1. 实验分组及处理 | 第15-16页 |
2. 动物模型的制备 | 第16页 |
(1) 动物饲养 | 第16页 |
(2) D-半乳糖致衰模型制备方法 | 第16页 |
(3) POCD模型制备——肝部分切除术 | 第16页 |
3. 电针干预方法 | 第16页 |
4. Y迷宫检测方法 | 第16-17页 |
5. 动物的组织取材 | 第17页 |
6. 相关指标及检测方法 | 第17-18页 |
(1) 石蜡切片制备 | 第17页 |
(2) GFAP、Iba-1、CD200、CD200R免疫组化染色 | 第17-18页 |
(3) ELISA法检测血清中IL-1β、IL-6、TNF-α水平 | 第18页 |
(三) 统计方法 | 第18-20页 |
二、结果 | 第20-26页 |
(一) Y迷宫检测结果 | 第20-21页 |
(二) 血清中IL-1β、IL-6、TNF-α水平检测结果 | 第21-23页 |
(三) 海马中GFAP、Iba-1、CD200和CD200R阳性细胞数的表达 | 第23-26页 |
三、分析与讨论 | 第26-33页 |
(一) 现代医学对POCD的认识 | 第26-27页 |
(二) 本实验动物模型的选择依据 | 第27-28页 |
1. 选择D-半乳糖致衰老模型的依据 | 第27页 |
2. 选择肝部分切除术的依据 | 第27-28页 |
(三) 本实验的选穴依据 | 第28页 |
(四) 电针对促炎细胞因子水平的调节 | 第28-30页 |
1. 电针对IL-1β水平的调节 | 第29页 |
2. 电针对IL-6水平的调节 | 第29-30页 |
3. 电针对TNF-α水平的调节 | 第30页 |
(五) 电针对神经胶质细胞活化的调节 | 第30-32页 |
1. 电针对小胶质细胞活化的调节 | 第31页 |
2. 电针对星形胶质细胞活化的调节 | 第31-32页 |
(六) 电针对CD200和CD200R表达的调节 | 第32-33页 |
四、结论 | 第33-34页 |
参考文献 | 第34-40页 |
附图 | 第40-44页 |
致谢 | 第44-45页 |
文献综述 | 第45-50页 |
参考文献 | 第48-50页 |