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电针改善致衰模型大鼠术后认知功能障碍的海马炎症反应调控机制

特别鸣谢第1-4页
目录第4-6页
中文摘要第6-8页
ABSTRACT第8-11页
前言第11-13页
一.实验材料与方法第13-20页
 (一) 实验材料第13-15页
  1. 实验动物第13页
  2. 主要试剂与药品第13-14页
  3. 试剂配置第14页
  4. 主要实验设备第14-15页
 (二) 实验方法第15-18页
  1. 实验分组及处理第15-16页
  2. 动物模型的制备第16页
   (1) 动物饲养第16页
   (2) D-半乳糖致衰模型制备方法第16页
   (3) POCD模型制备——肝部分切除术第16页
  3. 电针干预方法第16页
  4. Y迷宫检测方法第16-17页
  5. 动物的组织取材第17页
  6. 相关指标及检测方法第17-18页
   (1) 石蜡切片制备第17页
   (2) GFAP、Iba-1、CD200、CD200R免疫组化染色第17-18页
   (3) ELISA法检测血清中IL-1β、IL-6、TNF-α水平第18页
 (三) 统计方法第18-20页
二、结果第20-26页
 (一) Y迷宫检测结果第20-21页
 (二) 血清中IL-1β、IL-6、TNF-α水平检测结果第21-23页
 (三) 海马中GFAP、Iba-1、CD200和CD200R阳性细胞数的表达第23-26页
三、分析与讨论第26-33页
 (一) 现代医学对POCD的认识第26-27页
 (二) 本实验动物模型的选择依据第27-28页
  1. 选择D-半乳糖致衰老模型的依据第27页
  2. 选择肝部分切除术的依据第27-28页
 (三) 本实验的选穴依据第28页
 (四) 电针对促炎细胞因子水平的调节第28-30页
  1. 电针对IL-1β水平的调节第29页
  2. 电针对IL-6水平的调节第29-30页
  3. 电针对TNF-α水平的调节第30页
 (五) 电针对神经胶质细胞活化的调节第30-32页
  1. 电针对小胶质细胞活化的调节第31页
  2. 电针对星形胶质细胞活化的调节第31-32页
 (六) 电针对CD200和CD200R表达的调节第32-33页
四、结论第33-34页
参考文献第34-40页
附图第40-44页
致谢第44-45页
文献综述第45-50页
 参考文献第48-50页

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