| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 中英文对照 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-18页 |
| ·高原鼠兔简介 | 第11页 |
| ·植物单宁 | 第11-14页 |
| ·次生化合物及其分类 | 第11-12页 |
| ·青藏高原气候特点及其植被分布 | 第12-13页 |
| ·单宁及其作用 | 第13-14页 |
| ·植食性动物与植物的协同进化 | 第14-17页 |
| ·动植物协同进化 | 第14-15页 |
| ·植物对植食性动物的化学防御 | 第15-16页 |
| ·动物对次生化合物的应对策略 | 第16-17页 |
| ·细胞色素没及其研究现状 | 第17-18页 |
| 2 本论文的研究目的与意义 | 第18-19页 |
| 3 材料与方法 | 第19-35页 |
| ·实验仪器 | 第19-20页 |
| ·主要试剂 | 第20-21页 |
| ·试剂配制 | 第21-23页 |
| ·实验动物 | 第23-35页 |
| ·样品采集 | 第23页 |
| ·高原鼠兔肝脏细胞色素酶P450基因cDNA片段的克隆 | 第23-30页 |
| ·高原鼠兔肝脏总RNA的抽提 | 第23-24页 |
| ·RNA纯度及其完整性检测 | 第24页 |
| ·RNA反转录及其结果鉴定 | 第24-26页 |
| ·引物设计与合成 | 第26-27页 |
| ·高原鼠兔肝脏P450基因cDNA片段的PCR扩增 | 第27-28页 |
| ·PCR产物的纯化 | 第28页 |
| ·TA克隆 | 第28-29页 |
| ·序列分析和相似性比较 | 第29-30页 |
| ·实时荧光定量PCR检测基因的mRNA表达水平 | 第30-31页 |
| ·实时荧光定量引物的设计与鉴定 | 第30页 |
| ·基因反应条件的优化 | 第30页 |
| ·实时荧光定量PCR检测 | 第30-31页 |
| ·Western blot检测高原鼠兔肝脏P450酶含量的变化 | 第31-35页 |
| ·微粒体的提取 | 第31页 |
| ·微粒体蛋白含量的测定 | 第31-33页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第33页 |
| ·转膜 | 第33-34页 |
| ·封闭 | 第34页 |
| ·抗体反应 | 第34页 |
| ·化学发光,显影,定影 | 第34-35页 |
| 4 结果与分析 | 第35-48页 |
| ·高原鼠兔肝脏P450基因cDNA片段的克隆 | 第35-39页 |
| ·高原鼠兔肝脏CYP1A2 cDNA片段的PCR扩增结果及测序结果 | 第35-36页 |
| ·高原鼠兔肝脏CYP2E1 cDNA片段的PCR扩增结果及测序结果 | 第36-37页 |
| ·高原鼠兔与其他物种的CYP1A2的氨基酸序列比对结果 | 第37页 |
| ·高原鼠兔与其他物种的CYP2E1的氨基酸序列比对结果 | 第37-39页 |
| ·高原鼠兔肝脏P450基因mRNA表达量的变化 | 第39-45页 |
| ·高原鼠兔肝脏总RNA的抽提 | 第39-40页 |
| ·高原鼠兔肝脏总RNA反转录 | 第40页 |
| ·实时荧光定量PCR引物的鉴定 | 第40-42页 |
| ·不同月份高原鼠兔肝脏CYP1A2 mRNA表达量的变化 | 第42页 |
| ·不同剂量单宁酸对高原鼠兔肝脏CYP1A2 mRNA表达的影响 | 第42-43页 |
| ·不同月份高原鼠兔肝脏CYP2E1 mRNA表达量的变化 | 第43-44页 |
| ·不同剂量单宁酸对高原鼠兔肝脏CYP1A2 mRNA表达的影响 | 第44-45页 |
| ·高原鼠兔肝脏P450酶含量的变化 | 第45-48页 |
| ·不同月份高原鼠兔肝脏CYP1A2酶含量的变化 | 第45页 |
| ·不同剂量单宁酸对高原鼠兔肝脏CYP1A2酶含量的影响 | 第45-46页 |
| ·不同月份高原鼠兔肝脏CYP2E1酶含量的变化 | 第46页 |
| ·不同剂量单宁酸对高原鼠兔肝脏CYP2E1酶含量的影响 | 第46-48页 |
| 5 讨论 | 第48-51页 |
| 6 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 论文发表 | 第61页 |
| 参加课题所得资助 | 第61-62页 |
