摘要 | 第1-11页 |
Abstract | 第11-15页 |
缩略语录 | 第15-17页 |
1 前言 | 第17-27页 |
·研究背景 | 第17-19页 |
·醛固酮激素合成分泌研究进展 | 第19-22页 |
·喹噁啉药物的代谢研究进展 | 第22-24页 |
·天然氧化应激抑制剂研究进展 | 第24-25页 |
·研究内容和目标 | 第25-27页 |
2 材料和方法 | 第27-45页 |
·细胞株 | 第27页 |
·药品和试剂 | 第27-29页 |
·主要仪器和设备 | 第29-30页 |
·溶液配制 | 第30-33页 |
·细胞的复苏、传代和冻存 | 第33-34页 |
·细胞活力的检测 | 第34-35页 |
·MTT法检测喹噁啉类代谢物对NCI-H295R细胞的活力影响 | 第34-35页 |
·乳酸脱氢酶(LDH)释放测定 | 第35页 |
·醛固酮ALD激素的检测 | 第35-36页 |
·实时荧光定量PCR检测相关基因MRNA的表达 | 第36-39页 |
·细胞处理及分组 | 第36页 |
·总RNA的提取 | 第36-37页 |
·总RNA纯度及完整性的检测 | 第37页 |
·逆转录反应 | 第37-38页 |
·实时荧光定量PCR检测目的基因mRNA表达水平 | 第38-39页 |
·喹噁啉毒性代谢物及天然氧化应激抑制剂OPC对CYP11B1/CYP11B2蛋白表达的研究 | 第39-42页 |
·细胞处理及分组 | 第39页 |
·细胞蛋白提取及蛋白浓度测定 | 第39-40页 |
·SDS-PAGE电泳 | 第40-41页 |
·Western blot | 第41-42页 |
·氧化应激指标的检测 | 第42-44页 |
·细胞处理及分组 | 第42-43页 |
·MDA的检测 | 第43页 |
·SOD的检测 | 第43-44页 |
·GSH-Px的检测 | 第44页 |
·统计学分析 | 第44-45页 |
3 结果 | 第45-70页 |
·喹噁啉类药物致NCI-H295R细胞剂量及时间依赖性毒性作用 | 第45-48页 |
·喹嗯啉类代谢物对NCI-H295R细胞中LDH释放的影响 | 第48-49页 |
·喹噁啉类代谢物对NCI-H295R细胞醛固酮分泌的影响 | 第49-51页 |
·天然氧化应激抑制剂OPC对NCI-H295R细胞醛固酮激素分泌的影响 | 第51-53页 |
·总RNA质量 | 第53页 |
·喹噁啉类毒性代谢物对醛固酮合成酶CYP11B1/CYP11B2基因表达的时效量效关系 | 第53-55页 |
·天然氧化应激抑制剂OPC对醛固酮合成酶CYP11B1/CYP11B2基因表达的时效量效关系 | 第55-58页 |
·喹噁啉类毒性代谢物及天然氧化应激抑制剂OPC对CYP11B1基因调控表达的时效量效关系 | 第58-60页 |
·喹烯酮毒性代谢物 | 第58-59页 |
·乙酰甲喹毒性代谢物 | 第59页 |
·喹赛多毒性代谢物 | 第59-60页 |
·喹嗯啉类毒性代谢物及天然氧化应激抑制剂OPC对CYP11B2基因调控表达的时效量效关系 | 第60-64页 |
·喹烯酮毒性代谢物 | 第61-62页 |
·乙酰甲喹毒性代谢物 | 第62-63页 |
·喹赛多毒性代谢物 | 第63-64页 |
·喹噁啉类毒性代谢物及天然氧化应激抑制剂OPC对CYP11B1/CYP11B2蛋白表达的研究 | 第64-66页 |
·喹噁啉类毒性代谢物及天然氧化应激抑制剂OPC对NCI-H295R细胞氧化应激指标的影响 | 第66-70页 |
·喹烯酮毒性代谢物 | 第66-67页 |
·乙酰甲喹毒性代谢物 | 第67-68页 |
·喹赛多毒性代谢物 | 第68-70页 |
4 讨论 | 第70-79页 |
·喹噁啉代谢物对NCI-H295R细胞的毒性作用效应 | 第70页 |
·喹噁啉类代谢物对NCI-H295R细胞醛固酮分泌的影响及毒性代谢物的筛选 | 第70-72页 |
·天然氧化应激抑制剂对NCI-H295R细胞醛固酮及氧化应激的作用 | 第72-74页 |
·喹噁啉毒性代谢物及天然氧化应激抑制剂对NCI-H295R细胞醛固酮合成分泌调控机制的影响 | 第74-79页 |
·喹烯酮毒性代谢物的毒性作用机制 | 第75-76页 |
·乙酰甲喹毒性代谢物的毒性作用机制 | 第76-77页 |
·喹赛多毒性代谢物的毒性作用机制 | 第77-79页 |
5 全文总结 | 第79-80页 |
6 文献综述 | 第80-90页 |
参考文献 | 第90-105页 |
致谢 | 第105-106页 |
附录 | 第106-110页 |