| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 缩略词列表 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-19页 |
| ·miRNA 简介 | 第11页 |
| ·miRNA 的生物合成及剪切 | 第11-13页 |
| ·miRNA 的功能 | 第13-14页 |
| ·miRNA 的鉴定 | 第14-15页 |
| ·miRNA 靶基因的鉴定 | 第15页 |
| ·NAC 转录因子家族功能 | 第15页 |
| ·植物花器官的建成 | 第15-16页 |
| ·研究目的和意义 | 第16-17页 |
| ·研究内容和技术路线 | 第17-19页 |
| ·研究内容 | 第17-18页 |
| ·技术路线 | 第18-19页 |
| 2 番茄 miR164 前体序列及靶基因的克隆和表达分析 | 第19-31页 |
| ·实验用的材料、仪器 | 第19-21页 |
| ·菌株及质粒 | 第19页 |
| ·实验中所用的植物材料及生长条件 | 第19页 |
| ·主要实验试剂 | 第19页 |
| ·引物 | 第19-20页 |
| ·抗生素配制 | 第20页 |
| ·培养基及缓冲液 | 第20-21页 |
| ·主要仪器 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-26页 |
| ·植物物基因组 DNA 提取 | 第21-22页 |
| ·miR164 前体序列的克隆，切胶回收及测序 | 第22-23页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备与转化 | 第23页 |
| ·番茄总 RNA 的提取 | 第23-24页 |
| ·靶基因的扩增 | 第24-25页 |
| ·5′RACE 剪切位点分析 | 第25页 |
| ·靶基因剪切位点分析 | 第25-26页 |
| ·miR164 二级结构预测 | 第26页 |
| ·基因表达模式及定量 PCR | 第26页 |
| ·实验结果与分析 | 第26-31页 |
| ·miR164 前体序列的克隆 | 第26-27页 |
| ·miR164 二级结构预测 | 第27页 |
| ·剪切位点 5′RACE 验证分析 | 第27-28页 |
| ·靶基因 NAM 的克隆及位点突变 | 第28-30页 |
| ·miR164 及靶基因 NAM 的表达模式分析 | 第30-31页 |
| 3 番茄 miR164 及靶基因 NAM 的转基因研究 | 第31-52页 |
| ·材料与试剂 | 第31-34页 |
| ·菌株及载体 | 第31页 |
| ·植物材料及生长条件 | 第31页 |
| ·实验试剂 | 第31页 |
| ·引物 | 第31-32页 |
| ·抗生素 | 第32-33页 |
| ·培养基 | 第33-34页 |
| ·实验仪器 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-38页 |
| ·感受态细胞制备 | 第34页 |
| ·miR164 超表达载体的构建 | 第34-36页 |
| ·NAM 和 NAM-M 超表达载体的构建 | 第36页 |
| ·番茄遗传转化 | 第36-38页 |
| ·转基因植株的鉴定 | 第38页 |
| ·结果与分析 | 第38-52页 |
| ·miR164 超表达载体的构建 | 第38-39页 |
| ·NAM 超表达载体的构建 | 第39-40页 |
| ·NAM-M 超表达载体的构建 | 第40-41页 |
| ·番茄遗传转化及转基因植株鉴定 | 第41-44页 |
| ·转基因植株的表型分析 | 第44-48页 |
| ·定性分析 | 第48-50页 |
| ·miR164 调控番茄器官发育的模型 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 5 结论与工作展望 | 第54-55页 |
| ·结论 | 第54页 |
| ·后续工作展望 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 附录 | 第61页 |