| 缩略词表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-27页 |
| 一 植物抗旱机理研究进展 | 第11-17页 |
| 1 植物逆境生理的普遍机制 | 第11-12页 |
| 2 干旱胁迫的信号转导 | 第12-14页 |
| 3 干旱表达基因 | 第14-16页 |
| 4 干旱诱导蛋白 | 第16-17页 |
| 二 植物蛋白质组学研究进展 | 第17-22页 |
| 1 蛋白质组学的概念 | 第17-18页 |
| 2 蛋白质组学的主要研究方法 | 第18-22页 |
| ·蛋白质组研究的核心技术—双向聚丙烯酰胺凝胶电泳(2D-PAGE) | 第19-20页 |
| ·蛋白质组技术的支柱—鉴定技术(Identification) | 第20-22页 |
| ·图像分析技术(Image analysis) | 第20页 |
| ·质谱技术(Mass spectrometry) | 第20-22页 |
| ·蛋白质组研究的百科全书—数据库(Database) | 第22页 |
| 三 山黧豆及其抗逆性 | 第22-25页 |
| 四 立项依据和意义 | 第25-27页 |
| 第二章 PEG处理后山黧豆叶片蛋白质的表达分析 | 第27-45页 |
| 一 材料与方法 | 第27-31页 |
| 1 材料 | 第27-28页 |
| ·植物材料及培养条件 | 第27页 |
| ·主要生化试剂和仪器设备 | 第27-28页 |
| ·主要生化试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器设备 | 第27-28页 |
| 2 蛋白质的提取 | 第28页 |
| ·直接提取法 | 第28页 |
| ·改良丙酮沉淀法 | 第28页 |
| ·TCA-丙酮沉淀法 | 第28页 |
| 3 蛋白质定量 | 第28-29页 |
| 4 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第29-30页 |
| ·制胶和电泳 | 第29页 |
| ·凝胶染色 | 第29页 |
| ·凝胶图像获取 | 第29页 |
| ·图像分析 | 第29-30页 |
| 5 双向电泳(2-DE) | 第30-31页 |
| ·第一向固相化pH梯度等电聚焦电泳(IPG IEF) | 第30页 |
| ·平衡 | 第30页 |
| ·第二向SDS-PAGE垂直板电泳 | 第30页 |
| ·凝胶染色 | 第30-31页 |
| ·凝胶图像获取 | 第31页 |
| ·图像分析 | 第31页 |
| 二 结果 | 第31-42页 |
| 1 不同蛋白提取方法的提取效率及蛋白条带差异 | 第31-37页 |
| ·蛋白提取方法的选择 | 第31-33页 |
| ·经不同浓度PEG处理后山黧豆叶片蛋白条带的差异 | 第33-37页 |
| 2 双向电泳体系的优化和双向电泳图谱分析 | 第37-42页 |
| ·山黧豆叶片蛋白质双向电泳体系的优化 | 第37-40页 |
| ·不同等电聚焦参数对等电聚焦电泳的影响 | 第37-38页 |
| ·不同pH范围及不同长度的IPG胶条的等电聚焦效果 | 第38-39页 |
| ·考马斯亮蓝和银染联合使用的效果 | 第39页 |
| ·差异点分析方法 | 第39-40页 |
| ·山黧豆叶片蛋白双向电泳图谱分析 | 第40-42页 |
| ·凝胶图谱蛋白点检定和自动匹配 | 第40-41页 |
| ·PEG处理后山黧豆叶片双向电泳差异蛋白点分析 | 第41-42页 |
| 三 讨论 | 第42-45页 |
| 第三章 PEG处理后山黧豆叶片差异表达蛋白的质谱分析 | 第45-55页 |
| 一 材料与方法 | 第45-46页 |
| 1 实验材料 | 第45页 |
| 2 双向电泳及考马斯亮蓝染色 | 第45页 |
| 3 蛋白点的切取和胶内酶切 | 第45页 |
| 4 肽段提取 | 第45页 |
| 5 质谱分析 | 第45-46页 |
| 6 数据库检索 | 第46页 |
| 二 结果 | 第46-53页 |
| 1 差异蛋白的质谱分析 | 第46页 |
| 2 MALDI-TOF-TOF质谱鉴定结果的数据库检索 | 第46-53页 |
| 三 讨论 | 第53-55页 |
| 第四章 结论与展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 图版 | 第63-76页 |
| 在读期间文章发表情况 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 附录 | 第78-82页 |
