| 引言 | 第1页 |
| 1.文献综述 | 第12-32页 |
| ·生物体内的NO和H_2O_2 | 第12-21页 |
| ·NO和H_2O_2的理化性质 | 第12-13页 |
| ·植物物体内一氧化氮和过氧化氢的产生途径 | 第13-17页 |
| ·植物体内一氧化氮的产生途径 | 第13-15页 |
| ·一氧化氮合酶(NOS)途径 | 第13-14页 |
| ·硝酸还原酶或亚硝酸还原酶途径(NR／iNR) | 第14-15页 |
| ·黄嘌呤氧化还原酶(XOR)途径 | 第15页 |
| ·非酶促途径(Non-enzymatic system)合成一氧化氮 | 第15页 |
| ·植物体内过氧化氢的产生途径和代谢 | 第15-17页 |
| ·NO和H_2O_2在植物体内的生理功能 | 第17-20页 |
| ·NO在植物体内的生理功能 | 第17-18页 |
| ·一氧化氮(NO)与植物的生长发育 | 第17页 |
| ·一氧化氮(NO)与植物的防御反应 | 第17-18页 |
| ·一氧化氮(NO)与逆境胁迫 | 第18页 |
| ·一氧化氮(NO)与气孔的运动 | 第18页 |
| ·H_2O_2在植物体内的生理功能 | 第18-20页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)与植物的生长发育 | 第19页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)与植物细胞的死亡 | 第19页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)与植物的基因表达 | 第19-20页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)与植物的交叉耐性(cross-tolerance) | 第20页 |
| ·过氧化氢(H_2O_2)在气孔运动中的作用 | 第20页 |
| ·植物体内的NO和H_2O_2的信号转导机制 | 第20-21页 |
| ·保卫细胞是研究植物细胞信号转导途径的理想系统 | 第21-22页 |
| ·保卫细胞的结构特点 | 第21-22页 |
| ·气孔保卫细胞内的信使 | 第22页 |
| ·NO和H_2O_2在气孔运动中的信号转导作用 | 第22-27页 |
| ·NO在气孔运动中的信号转导作用 | 第22-24页 |
| ·NO对气孔运动的影响极其机制 | 第22-23页 |
| ·NO介导着许多因子对气孔运动的调节 | 第23-24页 |
| ·NO在ABA调控气孔运动中的作用 | 第23-24页 |
| ·H_2O_2在气孔运动中的信号转导作用 | 第24-26页 |
| ·H_2O_2对气孔运动中的作用及其机制 | 第24-25页 |
| ·H_2O_2介导着许多因子对气孔运动的影响 | 第25-26页 |
| ·H_2O_2在ABA调控气孔运动中的作用 | 第26页 |
| ·NO和H_2O_2在气孔运动中的相互作用 | 第26-27页 |
| ·NO和H_2O_2在UV-B辐射调控气孔运动中的作用 | 第27-31页 |
| ·UV-B辐射增强是一主要的环境问题 | 第27页 |
| ·UV-B辐射增强对植物的影响 | 第27-29页 |
| ·UV-B辐射增强对气孔运动的影响 | 第29-30页 |
| ·NO和H_2O_2在UV-B辐射信号转导中的作用 | 第30-31页 |
| ·论文的选题目的和意义 | 第31-32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-36页 |
| ·材料的培养 | 第32页 |
| ·化学试剂 | 第32页 |
| ·UV-B辐射对整体叶片和离体表皮条气孔影响的实验处理 | 第32-34页 |
| ·叶片翻转实验 | 第32-33页 |
| ·UV-B辐射处理 | 第33页 |
| ·整体叶片上各种化学试剂的处理 | 第33-34页 |
| ·UV-B辐射对离体表皮条气孔影响的实验处理 | 第34页 |
| ·ABA抑制离体表皮条气孔开放的实验处理 | 第34-35页 |
| ·不同浓度NO对气孔关闭影响的实验处理 | 第35页 |
| ·气孔开度的测量和气孔开度数据的处理 | 第35页 |
| ·光合参数的测量 | 第35页 |
| ·保卫细胞内源NO和H_2O_2的激光共聚焦显微镜测量 | 第35-36页 |
| 3 实验结果 | 第36-46页 |
| ·UV-B辐射诱导蚕豆叶片气孔关闭的间接效应与NO和H_2O_2有关 | 第36-40页 |
| ·UV-B辐射对叶片气孔开度和光合参数的影响 | 第36-38页 |
| ·外源SNP和H_2O_2对叶片气孔开度的影响 | 第38-39页 |
| ·CAT和ASA对UV-B辐射诱导叶片气孔关闭的影响 | 第39页 |
| ·cPTIO和L-NAME对UV-B辐射诱导叶片气孔关闭的影响 | 第39-40页 |
| ·UV-B辐射对蚕豆叶片保卫细胞内H_2O_2水平的影响 | 第40页 |
| ·UV-B辐射对蚕豆叶片保卫细胞内NO水平的影响 | 第40页 |
| ·NO和H_2O_2在ABA抑制蚕豆表皮条气孔开放中的作用 | 第40-44页 |
| ·ABA对蚕豆表皮条气孔开放的影响 | 第40-42页 |
| ·外源SNP和H_2O_2对气孔开放的影响 | 第42页 |
| ·CAT、DPI和SHAM对ABA抑制气孔开放的影响 | 第42页 |
| ·L-NAME和c-PTIO对ABA抑制气孔开放的影响 | 第42-43页 |
| ·ABA抑制气孔开放过程中保卫细胞内源H_2O_2水平的变化 | 第43页 |
| ·ABA抑制气孔开放过程中保卫细胞内源NO水平的变化 | 第43-44页 |
| ·不同浓度SNP对蚕豆表皮条气孔运动和保卫细胞内源H_2O_2水平的影响 | 第44-46页 |
| ·不同浓度SNP对蚕豆表皮条气孔运动的影响 | 第44页 |
| ·表皮条恢复实验 | 第44-45页 |
| ·不同浓度SNP对表皮条保卫细胞内源H_2O_2水平的影响 | 第45-46页 |
| 4 讨论 | 第46-52页 |
| ·UV-B辐射诱导蚕豆叶片气孔关闭的间接效应与NO和H_2O_2有关 | 第47-48页 |
| ·0.2W·m~(-2)UV-B辐射通过间接作用诱导了蚕豆叶片气孔关闭 | 第47页 |
| ·0.2W·m~(-2)UV-B辐射对蚕豆叶片气孔关闭的间接作用与NO和H_2O_2有关 | 第47-48页 |
| ·0.2W·m~(-2)UV-B辐射下蚕豆叶片保卫细胞内源NO和H_2O_2水平增高的原因 | 第48页 |
| ·ABA抑制蚕豆表皮条气孔开放与H_2O_2有关,而与NO无关 | 第48-50页 |
| ·H_2O_2在ABA抑制气孔开放中的作用及其来源 | 第48-49页 |
| ·NO没有参与ABA抑制的气孔开放 | 第49页 |
| ·研究NO和H_2O_2在ABA抑制气孔开放中作用的意义 | 第49-50页 |
| ·不同浓度SNP对气孔运动的影响及其机制的初步探讨 | 第50-52页 |
| ·不同浓度SNP对气孔运动的影响 | 第50-51页 |
| ·不同浓度SNP对气孔运动影响的不同与H_2O_2的关系 | 第51-52页 |
| 5 总结与展望 | 第52-53页 |
| 图版及图版说明 | 第53-56页 |
| 参考文献 | 第56-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第68页 |
