| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 综述 | 第8-21页 |
| 1．EGCG抗炎机理的研究进展 | 第8-11页 |
| 2．LPS诱导的p38 MAPK信号转导作用研究进展 | 第11-18页 |
| 3．急性肺损伤(ALI)的研究概况 | 第18-19页 |
| 4．p38 MAPK信号通路在ALI中的作用 | 第19-21页 |
| 第二章 EGCG体外对LPS的影响 | 第21-27页 |
| 1．前言 | 第21页 |
| 2．受试药 | 第21-22页 |
| 3．仪器 | 第22页 |
| 4．试剂 | 第22页 |
| 5．实验方法 | 第22-24页 |
| 5．1 透射电镜观察EGCG对LPS结构的影响 | 第22-23页 |
| 5．2 鲎试剂动态比浊法检测细菌内毒素的含量 | 第23-24页 |
| 6．实验结果 | 第24-25页 |
| 6．1 EGCG对LPS结构的影响 | 第24-25页 |
| 6．2 EGCG对内毒素含量的影响 | 第25页 |
| 7．讨论 | 第25-27页 |
| 第三章 EGCG对LPS激活小鼠巨噬细胞株RAW264.7的作用研究 | 第27-39页 |
| 1．前言 | 第27页 |
| 2．实验材料 | 第27页 |
| 3．仪器 | 第27-28页 |
| 4．试剂 | 第28-29页 |
| 5．实验方法 | 第29-34页 |
| 5．1 RAW264.7细胞的培养、传代与冻存 | 第29-30页 |
| 5．2 LPS溶液的配制 | 第30页 |
| 5．3 EGCG溶液的配制 | 第30页 |
| 5．4 Western blot法检测p38 MAPK的表达 | 第30-32页 |
| 5．5 ELISA法检测TNF-a的含量 | 第32-33页 |
| 5．6 ELISA法检测PGE_2的含量 | 第33-34页 |
| 6．实验结果 | 第34-36页 |
| 6．1 EGCG对LPS诱导的p38 MAPK磷酸化程度的影响 | 第34-35页 |
| 6．2 EGCG对细胞分泌TNF-a的影响 | 第35页 |
| 6．3 EGCG对细胞分泌PGE_2的影响 | 第35-36页 |
| 7．讨论 | 第36-39页 |
| 第四章 EGCG对LPS激活小鼠原代巨噬细胞的作用研究 | 第39-47页 |
| 1．前言 | 第39页 |
| 2．实验动物 | 第39页 |
| 3．仪器 | 第39-40页 |
| 4．试剂 | 第40-41页 |
| 5．实验方法 | 第41-44页 |
| 5．1 小鼠腹腔巨噬细胞的分离纯化 | 第41-42页 |
| 5．2 免疫细胞化学法检测p38 MAPK的表达 | 第42-43页 |
| 5．3 小鼠肺泡巨噬细胞的分离纯化 | 第43-44页 |
| 6．实验结果 | 第44-46页 |
| 6．1 小鼠腹腔巨噬细胞分离纯化结果 | 第44页 |
| 6．2 EGCG对LPS诱导巨噬细胞p38 MAPK磷酸化程度的影响 | 第44-45页 |
| 6．3 小鼠肺泡巨噬细胞分离纯化结果 | 第45-46页 |
| 7．讨论 | 第46-47页 |
| 第五章 EGCG对小鼠油酸型ALI模型的干预作用研究 | 第47-53页 |
| 1．前言 | 第47页 |
| 2．实验动物 | 第47页 |
| 3．仪器 | 第47-48页 |
| 4．试剂 | 第48-49页 |
| 5．实验方法 | 第49-50页 |
| 5．1 小鼠尾静脉注射油酸复制ALI模型 | 第49页 |
| 5．2 Western blot法检测肺组织p38 MAPK的表达 | 第49-50页 |
| 5．3 ELISA法检测血清TNF-a的含量 | 第50页 |
| 6．实验结果 | 第50-52页 |
| 6．1 注射油酸后肺组织取样时间的确定 | 第50页 |
| 6．2 EGCG对肺组织p38 MAPK磷酸化程度的影响 | 第50-51页 |
| 6．3 EGCG对血清TNF-a含量的影响 | 第51-52页 |
| 7．讨论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
