第一章 概述 | 第1-11页 |
1 概述 | 第7-10页 |
2 L-谷氨酰胺的基本性质 | 第10-11页 |
第二章 文献综述 | 第11-29页 |
1 手性化合物的合成方法 | 第11-15页 |
1.1 不对称合成 | 第11-12页 |
1.2 不对称合成的方法 | 第12-15页 |
1.2.1 以非对称的化合物作为起始反应物的不对称合成 | 第13-15页 |
2 拆分 | 第15-23页 |
2.1 结晶拆分法 | 第15-16页 |
2.1.1 晶体机械拆分法 | 第15页 |
2.1.2 接种结晶拆分法 | 第15-16页 |
2.2 形成和分离非对映立体异构体的拆分 | 第16-18页 |
2.3 色谱拆分法 | 第18-20页 |
2.3.1 气相色谱(GC) | 第18-19页 |
2.3.2 液相色谱法(HPLC) | 第19-20页 |
2.3.3 超临界色谱法(SFC) | 第20页 |
2.4 膜拆分法 | 第20-21页 |
2.5 微生物或酶拆分法 | 第21-23页 |
3 L-谷氨酰胺合成进展 | 第23-28页 |
3.1 不对称合成法 | 第23-26页 |
3.1.1 以硫酸为催化剂合成L-谷氨酰胺 | 第23页 |
3.1.2 以氯化氢为催化剂 | 第23-24页 |
3.1.3 胺基保护基的改进 | 第24页 |
3.1.4 催化还原法合成谷氨酰胺 | 第24-25页 |
3.1.5 异羟肟酸法合成谷氨酰胺 | 第25页 |
3.1.6 吡咯烷酮羧酸法 | 第25-26页 |
3.2 发酵法合成谷氨酰胺 | 第26-28页 |
3.2.1 采用谷氨酸产生野生菌株通过改变发酵条件来生产谷氨酰胺 | 第26-27页 |
3.2.2 采用谷氨酸产生菌的变异株来生产Gln | 第27页 |
3.2.3 酶法生产谷氨酰胺 | 第27-28页 |
4 研究路线选择 | 第28-29页 |
第三章 研究方案及反应机理 | 第29-35页 |
1 合成部分 | 第29-33页 |
1.1 L-谷氨酸的酯化 | 第29-31页 |
1.1.1 采用浓硫酸催化酯化法 | 第29-30页 |
1.1.2 氯化亚砜酯化法 | 第30-31页 |
1.2 氨解 | 第31-32页 |
1.3 酸解 | 第32页 |
1.4 精制 | 第32-33页 |
2 L-谷氨酰胺消旋化研究 | 第33-35页 |
2.1 L-α-消旋化的机理 | 第33-34页 |
2.2 L-谷氨酰胺合成过程中消旋化的研究 | 第34-35页 |
第四章 实验部分 | 第35-47页 |
1 实验原料及所需试剂 | 第35页 |
2 实验设备一览表 | 第35-36页 |
3 实验部分 | 第36-47页 |
3.1 L-谷氨酰胺消旋化研究 | 第36-38页 |
3.1.1 L-谷氨酰胺在水溶液中的消旋 | 第36-37页 |
3.1.2 L-谷氨酰胺在醋酸水溶液中的不对称转化 | 第37-38页 |
3.1.3 醋酸—甲醇溶液中L-谷氨酰胺的不对称转化 | 第38页 |
3.2 L-谷氨酸的制备 | 第38-39页 |
3.3 L-谷氨酸-γ-甲酯的制备(酯化反应) | 第39-44页 |
3.3.1 以H_2SO_4为催化剂的酯化反应 | 第39-42页 |
3.3.2 氯化亚砜法酯化反应 | 第42-44页 |
3.4 中和反应 | 第44页 |
3.5 氨解 | 第44页 |
3.6 酸解 | 第44-45页 |
3.7 精制 | 第45页 |
3.8 二硫化碳与静置时间对L-谷氨酰胺收率的影响 | 第45-47页 |
第五章 实验结果及讨论 | 第47-62页 |
1 谷氨酰胺消旋化研究 | 第47-49页 |
1.1 L-谷氨酰胺在水溶液中的消旋研究 | 第47-48页 |
1.2 L-谷氨酰胺在醋酸水溶液中的不对称转化 | 第48-49页 |
1.3 醋酸—甲醇溶液中L-谷氨酰胺的不对称转化 | 第49页 |
2 L-谷氨酸的酯化反应 | 第49-59页 |
2.1 浓硫酸催化酯化法 | 第49-55页 |
2.2 氯化亚砜酯化法 | 第55-59页 |
3 二硫化碳用量与静置时间对L-谷氨酰胺收率的影响 | 第59-60页 |
4 氨解 | 第60页 |
5 酸解 | 第60-61页 |
6 精制 | 第61页 |
7 产品分析 | 第61-62页 |
第六章 结论 | 第62-64页 |
参考文献 | 第64-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
附录Ⅰ L-谷氨酸-γ-甲酯红外吸收光谱 | 第68-69页 |
附录Ⅱ L-谷氨酰胺红外吸收光谱 | 第69页 |