| 致谢 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-34页 |
| 1 植物抗寒性研究综述 | 第15-26页 |
| ·低温胁迫对植物细胞膜体系的影响 | 第15-16页 |
| ·低温胁迫对植物光合作用系统的影响 | 第16-20页 |
| ·低温胁迫对光合机构结构和活性的影响 | 第17-18页 |
| ·低温胁迫影响了其它生理过程从而间接地影响光合作用 | 第18-19页 |
| ·低温胁迫对叶绿素荧光系统的影响 | 第19-20页 |
| ·低温胁迫对植物保护酶系统的影响 | 第20-21页 |
| ·植物抗寒性的细胞学机制 | 第21页 |
| ·植物对低温逆境的信号转导机制研究 | 第21-23页 |
| ·植物低温诱导蛋白 | 第23-25页 |
| ·植物低温诱导表达基因 | 第25-26页 |
| ·当前植物抗寒性研究的主要领域及趋势 | 第26页 |
| 2 桉树抗寒生理生化及抗性选育的研究进展 | 第26-31页 |
| ·桉树抗寒生理生化研究材料的选择与处理 | 第26-27页 |
| ·桉树对低温逆境的生理生化响应 | 第27-29页 |
| ·电导率 | 第27-28页 |
| ·保护酶活性 | 第28页 |
| ·膜脂过氧化产物丙二醛含量 | 第28页 |
| ·细胞膜脂肪酸组成与含量 | 第28页 |
| ·光合性能的变化 | 第28-29页 |
| ·其他内含物的变化 | 第29页 |
| ·桉树抗寒的分子机理研究 | 第29-30页 |
| ·我国耐寒桉树选育概况 | 第30页 |
| ·研究存在的不足 | 第30-31页 |
| 3 本研究的目的、意义及研究策略 | 第31-32页 |
| 4 研究材料生物学特性简介 | 第32-34页 |
| ·尾叶桉 | 第32-33页 |
| ·邓恩桉 | 第33-34页 |
| 第二章 桉树对夜间低温胁迫的生理响应 | 第34-52页 |
| 前言 | 第34页 |
| 1.材料与方法 | 第34-38页 |
| ·材料及实验设计 | 第34-35页 |
| ·实验材料 | 第34-35页 |
| ·实验设计 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-38页 |
| ·叶绿素的测定 | 第35-36页 |
| ·蛋白质的测定 | 第36页 |
| ·超氧化物歧化酶的测定 | 第36-37页 |
| ·过氧化物酶的测定 | 第37页 |
| ·丙二醛的测定 | 第37页 |
| ·气体交换参数测定 | 第37-38页 |
| ·光响应曲线测定和CO_2响应曲线测定 | 第38页 |
| ·叶绿素荧光参数测定 | 第38页 |
| ·数据分析与统计方法 | 第38页 |
| 2.结果与分析 | 第38-47页 |
| ·夜间低温胁迫对两种桉树幼苗叶绿素含量的影响 | 第38-40页 |
| ·夜间低温胁迫对蛋白质含量的影响 | 第40页 |
| ·夜间低温胁迫对SOD和POD活性的影响 | 第40-41页 |
| ·夜间低温胁迫对MDA含量的影响 | 第41-42页 |
| ·夜间低温胁迫对气体交换参数的影响 | 第42-44页 |
| ·夜间低温胁迫下叶片光合作用对不同光强的响应 | 第44-45页 |
| ·夜间低温处理后两种桉树幼苗叶片光合作用对不同CO_2浓度的响应 | 第45-46页 |
| ·夜间低温处理后两种桉树叶绿素荧光参数的影响 | 第46-47页 |
| 3.结论与讨论 | 第47-52页 |
| ·夜间低温胁迫与保护酶系统活性的关系 | 第47-48页 |
| ·夜间低温胁迫对桉树光合作用产生明显的影响 | 第48-49页 |
| ·RuBPCase的活性降低是影响桉树光合作用下降的主要非气孔因素 | 第49-50页 |
| ·夜间低温处理对叶绿素荧光参数的影响 | 第50-52页 |
| 第三章 持续低温胁迫对桉树的光合生理特性的影响 | 第52-64页 |
| 前言 | 第52页 |
| 1.材料与方法 | 第52-54页 |
| ·材料及实验设计 | 第52-53页 |
| ·实验材料 | 第52-53页 |
| ·实验设计 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·叶绿素的测定 | 第53页 |
| ·超氧化物歧化酶的测定 | 第53页 |
| ·丙二醛的测定 | 第53页 |
| ·气体交换参数测定 | 第53页 |
| ·光响应曲线测定和CO_2响应曲线测定 | 第53页 |
| ·叶绿素荧光参数测定 | 第53页 |
| ·数据统计与分析 | 第53-54页 |
| 2.结果与分析 | 第54-60页 |
| ·持续低温胁迫对两种桉树幼苗叶绿素含量的影响 | 第54-55页 |
| ·持续低温胁迫对SOD活性和MDA含量的影响 | 第55页 |
| ·持续低温胁迫对气体交换参数的影响 | 第55-57页 |
| ·持续低温胁迫下叶片光合作用对不同光强的响应 | 第57-58页 |
| ·持续低温处理后两种桉树幼苗叶片光合作用对不同CO_2浓度的响应 | 第58-59页 |
| ·持续低温处理后两种桉树叶绿素荧光参数的影响 | 第59-60页 |
| 3.结论与讨论 | 第60-64页 |
| ·持续低温胁迫引起光合作用下降的因素分析 | 第60-61页 |
| ·尾叶桉和邓恩桉对低温胁迫响应的差异 | 第61-62页 |
| ·光合特性参数和叶绿素荧光参数可以作为桉树抗寒评价的指标 | 第62-64页 |
| 第四章 桉树响应低温胁迫的蛋白质双向电泳分析 | 第64-78页 |
| 前言 | 第64-65页 |
| 1 实验材料与实验方法 | 第65-68页 |
| ·实验材料及试验处理 | 第65页 |
| ·实验试剂 | 第65页 |
| ·主要仪器 | 第65页 |
| ·样品制备 | 第65-66页 |
| ·双向电泳 | 第66-68页 |
| ·染色 | 第68页 |
| ·图像的扫描与分析 | 第68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-75页 |
| ·电泳条件优化 | 第68-70页 |
| ·低温胁迫下尾叶桉和邓恩桉差异蛋白分析 | 第70-75页 |
| 3 结论与讨论 | 第75-78页 |
| ·低温胁迫会导致两种桉树叶片的蛋白质表达发生变化 | 第75-76页 |
| ·低温胁迫会导致两种桉树叶片蛋白的降解 | 第76页 |
| ·两种桉树响应低温胁迫的蛋白质表达存在差异 | 第76-78页 |
| 第五章 低温胁迫对桉树幼苗叶肉细胞超微结构的影响 | 第78-93页 |
| 前言 | 第78页 |
| 1 材料与方法 | 第78-80页 |
| ·实验材料 | 第78页 |
| ·实验设计 | 第78-79页 |
| ·实验试剂和实验方法 | 第79-80页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第79页 |
| ·实验方法 | 第79-80页 |
| 2 结果与分析 | 第80-82页 |
| ·低温胁迫对叶片相对电导率的影响 | 第80页 |
| ·低温胁迫对叶肉细胞超微结构的影响 | 第80-82页 |
| ·低温胁迫前两种桉树正常叶肉细胞的超微结构 | 第80-81页 |
| ·零度处理12h对两种桉树叶肉细胞超微结构的影响 | 第81页 |
| ·零度处理24h对两种桉树叶肉细胞超微结构的影响 | 第81页 |
| ·零度处理48h对两种桉树叶肉细胞超微结构的影响 | 第81-82页 |
| ·零下5度处理24h对两种桉树叶肉细胞超微结构的影响 | 第82页 |
| 3 结论与讨论 | 第82-93页 |
| ·低温胁迫对叶绿体结构的影响 | 第82-83页 |
| ·低温胁迫下淀粉粒的变化 | 第83-84页 |
| ·低温胁迫下液泡内含物的变化 | 第84-93页 |
| 第六章 桉树低温胁迫下Ca~(2+)分布的时空变化 | 第93-102页 |
| 前言 | 第93-94页 |
| 1.材料和方法 | 第94-95页 |
| ·实验材料及实验处理 | 第94页 |
| ·实验材料 | 第94页 |
| ·实验处理 | 第94页 |
| ·实验方法 | 第94-95页 |
| 2.观察结果 | 第95-96页 |
| ·正常生长条件下的两种桉树叶片细胞内Ca~(2+)的定位分布 | 第95页 |
| ·低温胁迫处理后两种桉树叶片细胞内Ca~(2+)的定位分布 | 第95-96页 |
| 3 结论与讨论 | 第96-102页 |
| 第七章 桉树低温胁迫下ATP酶的超微细胞化学研究 | 第102-110页 |
| 前言 | 第102页 |
| 1.材料和方法 | 第102-104页 |
| ·材料 | 第102-103页 |
| ·实验材料 | 第102-103页 |
| ·实验处理 | 第103页 |
| ·方法 | 第103-104页 |
| 2.观察结果 | 第104页 |
| ·正常生长条件下的两种桉树叶片细胞内的ATP酶 | 第104页 |
| ·低温胁迫后两种桉树叶片细胞内的ATP酶 | 第104页 |
| 3 结论与讨论 | 第104-110页 |
| 第八章 结论与展望 | 第110-113页 |
| 1 主要结论 | 第110-111页 |
| 2 展望 | 第111-113页 |
| 参考文献 | 第113-129页 |
| 详细摘要 | 第129-134页 |
